厚荚相思组织培养与快速繁殖

以5年生厚荚相思(Acacia crassicarpa)的萌芽茎段为外植体进行了组织培养的初步研究，结果表明：改良的MS 6-BA2．0mg／L NAA0．2mg／L培养基能够较好地诱导芽的分化和增殖；适宜的继代增殖培养基为改良MS 6-BA1．5mg／L NAA0．2mg／L；较为想的生根培养基为1／2MS IBA0．5mg／L，生根率达95．0％；生根苗的移栽基质以黄心土的移栽效果最好，移栽成活率达90．0％。     

蒜头果组织培养再生系统的初步研究

以蒜头果（Malania oleifera）种子萌发获得的无菌苗进行离体培养的初步研究．结果表明：MS＋6-BA1．5mg／L＋NAA0．1mg/L激素组合能够较好地诱导芽的初始分化和增殖；适宜的继代增殖培养基为MS＋6-BA1．0mg/L＋NAA0．2mg/L；采用1／2MS＋IBA0．5mg/L为生根培养基，生根率为45．0％；移栽到河沙的生根苗成活率为52．5％．     

湿地松丛生芽的诱导及试管苗的生根研究

利用湿地松种子进行丛生芽的诱导及试管苗生根研究。结果发现：改良GD培养基适合湿地松离体胚的生长；以湿地松带子叶顶芽为外植体，在附加有3mg／L 6-BA和0．05mg／L的NAA改良GD培养基上可诱导湿地松丛生芽的形成，诱导率最高为73．3％；湿地松试管苗不定根诱导较为适宜的组合是1／2MS＋0．05mg／L NAA，诱导率可达60％，而无激素的1／2改良GD有利于根的伸长。     

裂叶秋海棠的离体快速繁殖

利用野生裂叶秋海棠叶片及叶柄培养，通过两种方式获得大量再生植株。(1)直接从外植体表面诱导出不定芽，最佳诱导培养基为MS 6-BA 3mg／L，不定芽在培养基MS NAA0．5mg／L 6-BA0．5mg／L增殖成丛生芽．(2)先诱导出愈伤组织，再由愈伤组织分化出大量不定芽．最佳愈伤组织诱导培养基为MS NAA0．5mg／L 2，4-D0．5mg／L 6-BA0．5mg／L,愈伤组织不定芽分化培养基为MS 6-BA 1mg／L,试管苗在含1／5MS无机盐的培养基上生根，之后移栽成活率达85％。     

米邦塔食用仙人掌组培快繁技术研究

探索了米邦塔食用仙人掌组培快繁技术。得出不定芽诱导使用培养基MS＋6-BA3．0mg／L＋NAA0．1mg/L，外植体分化率达77．3％；继代增殖使用培养基MS＋6-BA1mg／L＋KT0．5mg／L＋NAA0．3mg/L，试管苗平均增殖倍数达10.19，结合反复利用原外植体的方法，增殖效率可进一步提高；生根培养基使用1／2 MS＋NAA0．1mg／L＋IBA0．1mg／L，生根率达100％，且根系发育优良；驯化及试管苗入地后，以保湿为主要管理措施，可保证移栽成活率在95％左右。     

滇越金线莲快速繁殖技术研究

通过滇越金线莲种子无菌诱导和茎诱导芽以及丛生芽增殖、生根等试验，得出结论：滇越金线莲种子在不含激素的Hyponex 1培养基上有较好萌发率，并且在添加10％椰乳后原球茎能分化出健壮的苗。外植茎在Hyponex 1＋6-BA 1mg／L＋NAA 0．01／L培养基上诱导产生芽的几率最高；最佳增殖培养基是Hyponex 1＋BA 0．5mg／L＋NAA 0．1mg／L；生根培养基是Hyponex 1＋6-BA0．05mg／L＋NAA0．1mg／L。     

非洲紫罗兰的组织培养和植株再生

对非洲紫罗兰的组织培养研究表明,外植体消毒以0．1％的升汞溶液浸泡7～8min为宜;不同激素浓度对其芽丛的形成、分化及根的形成有不同的影响;生长素与细胞分裂素的比例决定着芽丛的形成;小苗在1／2MS培养基上生根最好,6-BA对其生根有抑制作用．各培养阶段的最适培养基分别为,芽诱导培养基MS 2mg／L 6-BA 0．2mg／L NAA,芽分化培养基MS 1mg／L 6-BA 0．1mg／L NAA,壮苗培养基MS 0．1 mg／L NAA,生根培养基1／2MS 0．2mg／L IBA。     

大叶饲料槐高频再生体系建立及试管苗工厂化生产

通过叶片外植体愈伤组织诱导和直接不定芽再生途径，建立了大叶饲料槐的高频再生系统，采用正交试验筛选出愈伤组织最适诱导培养基为；MS附加0．5mg／L 6-BA和1．0mg／L NAA；愈伤组织分化最适培养基为：MS附加2．0mg／L 6-BA和0．2mg／L NAA。叶片外植体直接分化最适培养基为：MS附加2．0mg／L 6-BA和0．1mg／L NAA；试管苗在1／2MS附加0．2mg／L IBA、0．1mg／L NAA和2g／L AC的培养基上生根率高达100％，移栽成活率达90％，从而实现了大叶饲料槐的工厂化生产．     

鸡蛋花愈伤组织诱导和植株再生的研究

对以鸡蛋花叶片作为外植体进行愈伤组织诱导和植株再生研究，发现MS NAA0．1mg／L 6-BA 1mg／L对愈伤诱导效果最好，出愈率达96％；愈伤组织分化为芽时，MS NAA0．1mg／L 6-BA 2mg／L效果最好，分化率达98％．生根培养基为1／2MS NAA0．1mg／L．     

菠萝蜜的组织培养

选取经资源调查及品质分析后获得的优良植株的顶芽和腋芽为材料，诱导腋芽的萌发和不定芽增殖生根．结果表明：从3月下旬到5月上旬是菠萝蜜组织培养大田取材的最佳时间，该时期接种材料污染率（〈50％）及褐变率（〈5％）均较低；启动培养的培养基最佳组合是MS＋6-BA2．0mg／L＋KT1．0mg／L＋GA。0．5mg／L＋蔗糖20g／L，腋芽诱导率为44．6％，KT含量较高（1．0mg／L）有利于腋芽的诱导，诱导率平均为（40％）；不定芽增殖培养的培养基最佳组合是MS＋6-BA1．5mg／L＋KT0．1mg／L＋GA。0．5mg／L＋蔗糖40g／L，增殖率为2．61，蔗糖含量较高（40g／L）有利于不定芽的增殖，增殖率平均为2．34；生根培养以1／2MS＋IBA1．5mg／L＋NAA0．2mg／L最好，接种8d开始生根，生根率15．8％，15d根长3～4cm，平均根数3～4条．     

丽格海棠的组织培养与快速繁殖研究

以丽格海棠的茎状、叶柄、叶片为外植体进行组织培养。最佳培养基：（1）诱导培养基MS＋6－BA4．0mg/L(单位下同）＋IBA1．0；（2）增殖培养基MS＋6－BA0．5＋IAA0．2；（3）生根培养基MS＋NAA0．2．生根壮苗培养50d左右，经移栽，成活率达92％左右。     

贴梗海棠组培快繁技术研究

对贴梗海棠的外植体进行了愈伤组织和植株再生体系研究．结果表明,带芽茎段为最适外植体;诱导芽的最适培养基为Ms＋6-BA1．0mg／L＋NAA0．2mg／L芽生长培养基为MS＋6-BA2．0mg／L＋NAA0．2mg／L;在1／2MS＋NAA0.3mg／L培养基上,生根率为90％．     

千屈菜的组织培养及再生体系建立的研究

以千屈菜的嫩茎为材料,进行了愈伤组织的诱导和分化、不定芽分化、试管苗生根、移栽、扦插和移植的研究,成功建立起千屈菜的无性系.结果证明:MS+BA0.2mg/L+2,4-D0.8mg/L和1/2MS+BA0.2mg/L+2,4-D0.8mg/L是诱导培养嫩茎愈伤组织的理想培养基;MS+AgNO31.0mg/L+BA0.6mg/L+NAA0.2mg/L是嫩茎愈伤组织分化培养的理想培养基;MS+BA0.5mg/L+NAA0.1mg/L是不定芽分化继代培养的理想培养基;1/2MS+IAA0.2mg/L是试管苗生根培养和生根继代培养的理想培养基;炉灰渣是试管苗移栽和扦插的理想基质;移植到花坛上的试管苗生长旺盛,根系增加1倍左右.     

铁线莲‘朱卡’组织培养技术及再生体系的建立

【目的】以铁线莲‘朱卡’(Clematis ‘Julka’)的带芽茎段为起始材料,通过组织培养方法建立再生体系。【方法】利用腋芽诱导—不定芽增殖—生根和愈伤组织诱导—增殖—分化—生根两种途径,建立该品种的组织培养再生体系,形成铁线莲‘朱卡’完整植株。【结果】铁线莲‘朱卡’组织培养最适宜灭菌条件为质量分数10%次氯酸钠溶液灭菌12min;带芽茎段诱导腋芽最适培养基为MS+NAA 0.1 mg/L+6-BA 1.0 mg/L,不定芽增殖最适培养基为MS+IBA 0.20 mg/L+6-BA 1.0 mg/L+GA₃ 0.2 mg/L;带芽茎段诱导愈伤组织最适培养基为MS+NAA 0.05 mg/L+6-BA 2.0 mg/L,愈伤组织增殖最适培养基为MS+NAA 0.20 mg/L +6-BA 2.0 mg/L,愈伤组织分化最适培养基为MS+NAA 0.03 mg/L+6-BA 3.0 mg/L;最佳生根培养基为1/2 MS+IBA 0.3 mg/L。【结论】首次用两种器官发生方法建立了稳定高效的铁线莲‘朱卡’再生体系。直接形成不定芽时增殖倍数可达5.52。诱导愈伤组织途径的器官发生中,愈伤组织分化率可达76.7%,分化不定芽平均数超过3。两种途径诱导生根率都在90%以上。     

金钗石斛兰组培苗的生根培养和移栽

以1/2MS为基本培养基,添加不同浓度的NAA、IBA和6-BA,配置16种培养基进行试验,筛选最适宜于金钗石斛兰生根的培养基.结果显示:1/2MS+0.2 mg/L 6-BA+1.0 mg/L NAA+0.5 mg/L IBA及1/2MS+0.5 mg/L 6-BA+1.0 mg/L NAA+0.2 mg/L IBA培养基最适宜于金钗石斛兰生根,生根率达100%,而且根系生长健壮.将金钗石斛兰生根组培苗移栽于6种不同的基质中,结果表明,以棕榈外壳作为移栽基质最佳,移栽成活率达100%,且幼苗生长良好.     

火龙果茎段离体培养快速繁殖试验

选取火龙果当年春季抽出的未老熟茎段作外植体，以MS为基本培养基，诱导腋牙生长及继代培养时附加6－BA和NAA，6－BA浓度为1.0-12.0mg/L,NAA浓度为0.2-0.8mg/L，诱导生根时附加IBA，IBA浓度为0.5mg/L,1.0mg/L,1.5mg/L,试验结果表明：以MS基本培养基附加6-BA2.0mg/L NAA0.2mg/L有利于诱导腋芽生长，附加6－BA12.0mg/L NAA0.1mg/L有利诱导增殖和继代，附加IBA1.5mg/L诱导生根最好，生根培养7d后始生根，培养20d生根率达96.7%，将火龙果生根苗移栽到菜园土和细砂基质，成活率均达100％，以细砂为基质的移栽苗木生长较好，说明火龙果的组培苗移栽需要有良好的透水，透气条成活率均达100％，以细砂为基质的移栽苗木生长较好，说明火龙果的组培苗移栽需要有良好的透水，透气条件。     

黑芝麻下胚轴离体培养的研究

以晋芝3号黑芝麻(Sesamum indicumDC)无菌苗的下胚轴作为外植体,诱导培养基以MS为基本培养基,添加2.0mg/L6-BA与(0.1mg/L,0.2 mg/L,0.3 mg/L,0.4 mg/L,0.5 mg/L)以及NAA(0.5 mg/L,1.0 mg/L,1.5 mg/L,2.0 mg/L),共9种组合;生根培养基以1/2MS为基本培养基,添加NAA(0.1 mg/L,0.3 mg/L,0.5 mg/L)以及0.1 mg/LNAA和0.1 mg/LIAA,共4种组合,旨在此培养基上诱导黑芝麻下胚轴产生愈伤组织并分化出再生植株。结果表明:在MS+2.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L IAA培养基上的再生诱导率最高,可达81.8%,并且可使部分下胚轴切段形态学上端形成芽;在1/2MS+0.1mg/L NAA培养基上,再生苗的生根率达100%。     

驱蚊草组织培养及其再生体系的建立与优化

通过对驱蚊草离体叶片和茎段的培养及植株再生的研究,成功地建立了驱蚊草组织培养快繁技术体系.用0.1%升汞对叶片、叶柄和茎段进行消毒,最佳消毒时间分别为6.5、6.0、7.0 m in;叶片和茎段不定芽诱导的最适培养基为M S BA(1.0 m g/L) NAA(1.0 m g/L),叶柄为M S BA(0.5 m g/L) NAA(0.5 m g/L);不定芽的最适增殖培养基为M S BA(0.75 m g/L) NAA(0.6 m g/L) GA3(0.2 m g/L),增殖倍数为6.1;最适生根培养基为1/2 M S培养基,生根率92%,平均每株生根数为10条.     

大叶常绿杜鹃叶片离体培养及不定芽再生

以大叶常绿杜鹃无菌苗的嫩叶为试验起始材料,研究了其离体培养和不定芽再生的过程。结果表明:培养基为MS+ZT(1.0 mg/L)+ NAA(0.1 mg/L)时,大叶常绿杜鹃叶片可直接诱导再生不定芽,诱导率达70%; 也可以通过愈伤组织途径间接诱导出不定芽,愈伤组织诱导培养基为MS+2,4-D(2.0 mg/L)+KT(0.2 mg/L),增殖最佳培养基为MS+ZT(0.5 mg/L)+IBA(0.1 mg/L),愈伤组织分化的最佳培养基为MS+ZT(0.04 mg/L)+NAA(0.01 mg/L); 分化率最高为70%,分化苗数为6～10株; 生根培养基为MS+NAA(0.2 mg/L)+IBA(0.4 mg/L)时,生根率可达90%。腐殖土、黄沙、珍珠岩配比为4:1:1的混合基质较适合常绿杜鹃试管苗的炼苗移栽,成活率为90%。     

耐盐碱刺槐离体再生快繁体系的建立与优化

为提高耐盐碱刺槐的快繁效率,满足沿海及滨海盐碱地区绿化要求,以耐盐碱刺槐无性系"W009"和"W038"为试材,研究不同条件对耐盐碱刺槐试管苗分化和生根的影响.结果表明:两刺槐茎尖初代接种不定芽萌发率均好于茎段,"W009"离体茎尖不定芽萌发的最适培养基为MS+6-BA 0.5 mg·L~(-1)+NAA 0.05mg·L~(-1),茎段不定芽萌发的最适培养基为MS+6-BA 1.0mg·L~(-1)+NAA 0.1mg·L~(-1);而适合"W038"离体茎尖和茎段不定芽萌发的最适培养基则为MS+6-BA 1.0mg·L~(-1)+NAA 0.1 mg·L~(-1);适合"W009"不定芽增殖的培养基为MS+6-BA 1.0mg·L~(-1)+NAA 0.05mg·L~(-1),"W038"不定芽增殖的培养基为MS+6-BA 2.0mg·L~(-1)+NAA 0.1 mg·L~(-1);"W009"最适生根培养基为:1/2 MS+0.1 mg·L~(-1) IBA+0.2mg·L~(-1) NAA+1.0g·L~(-1)活性炭;"W038"最适生根培养基为:1/2 MS+0.3 mg·L~(-1) IBA+0.2 mg·L~(-1) NAA+1.0g·L~(-1)活性炭.