植物激素对烟草表皮薄细胞层离体培养中器官诱导及过氧化物酶和脂酶同工酶的变化

烟草表皮,亚表皮薄细胞层(3-6层细胞)培养在MS培养基内,加入不同浓度的IAA/BA,IBA/BA和2.4D/BA,可较专一性地诱导根,芽及愈伤组织的形成,但未能形成花芽,试验结果表明,在合适的植物激素相组合和蔗糖浓度的作用下,以烟草表皮亚表皮薄细胞层进行离体培养是研究形态发生,调节控制器官形成的一个比较理想的试验系统。实验分析了分化和未分化的组织中过氧化物同工酶和脂酶同工酶的变化,在分化的组织中,过氧化物同工酶谱带略有增加,脂酶同工酶谱带无显著变化。     

加龙杨(Poqulus nigra cv.Blanc de garonne)茎尖组织培养及其同工酶的变化

<正>采用H培养基附加适量的2,4—D(2—3毫克/升)及BA(0.5毫克/升),诱导杨树茎尖愈伤组织的效果较好。 在低浓度BA(0.1毫克/升)及NAA(0.1毫克/升)的分化培养基上,茎叶很快分化。在愈伤组织形成幼小植株的过程中,同工酶酶谱有明显的变化。     

凤尾兰花瓣组织培养初报

将凤尾兰花瓣接种于MS基本培养基上,培养基附加2.4—D0、5mg/l、NAA0.5—1mg/l、6—BA2mg/l、水解乳蛋白500mg/l及蔗糖3％诱导愈伤组织的形成。MS培养基附加6—BA2mg/l,NAA0.5mg/l及蔗糖3％诱导愈伤组织分化。值得注意的是在培养过程中,花瓣小片以及愈伤组织的颜色有几次转变。在愈伤组织上首先分化出小根,逐渐分化出小苗。     

石刁柏花药离体培养

诱导石刁柏花药产生愈伤组织的频率高低,同培养基中2.4—D浓度、花药低温预处理因素相关;诱导愈伤组织分化芽点获得胚性细胞后,转入N_6或MS培养基上,均可获得理想的增苗效果;石刁柏花粉试管苗在繁苗或生根培养基中根芽不能同步发生,生根需要专用培养基。     

芦柑子叶培养中过氧化物酶活性及其同工酶的变化

以芦柑子叶为外植体，对脱分化产生愈伤组织至再分化产生器官的发育过程中过氧化物酶活性及同工酶谱变化的研究结果表明，再分化过程的酶活性高于脱分化过程，根分化过程的酶活性高于芽分化过程。同工酶分析揭示出１０条酶带，其中由子叶经愈伤组织到分化出芽的过程中先后出现了９条酶带，带５（Ｒ＿ｆ＝０．１６７）为这一过程所特有；由子叶经愈伤组织到分化出根的过程中也先后出现了９条酶带，带６（Ｒ＿ｆ＝０．２２５）为该过程所特有。     

胡萝卜愈伤组织培养中苯丙氨酸解氨酶与分化的关系

何奕昆,等.四川师院生物系植物学集刊 1991:169—175本文采用继代一二年的胡萝卜愈伤组织与新诱导的愈伤组织进行对比,较为详细地研究了各种愈伤组织的分化能力与分化水平.结果表明:继代一年的愈伤组织仍具有器官分化能力;两年以后在固体培养基上未诱导出器官,但在液体培养基中(添加2,4—D1.0mg/1)却诱     

药用甘薯组织培养中酶谱的变化初报

药用甘薯—西蒙1号的离体茎、叶及块根外植体,在含有不同配比的植物生长调节剂的MS培养基中可脱分化形成愈伤组织.改变植物生长调节剂的配比,可使其再分化形成根.如切取茎尖或带腋芽的茎段,则可直接形成小植株.西蒙1号茎、叶及块根脱分化形成的愈伤组织及再分化形成的根,其过氧化物酶及淀粉酶同工酶活性,以及谱带数均有所不同,这些变化与其分化状态有关.     

外源激素诱导甜瓜下胚轴愈伤组织的效应

在1/2MS的基本培养基中附加2,4-D1.0毫克/升、6-BA2.0毫克/升或2,4-D0.1毫克/升和6-BA1.0毫克/升,都能诱导甜瓜下胚轴发生愈伤组织。但是,不同激素作用下,甜瓜下胚轴愈伤组织的起源不同。2,4-D诱导维管束中薄壁细胞和紧靠维管束的一圈皮层细胞启动。6-BA诱导维管束中发生形成层以及诱导皮层细胞启动。不仅如此,2,4-D和6-BA对甜瓜下胚轴中可溶性蛋白的含量以及过氧化物酶活性影响也明显不同。在过氧化物同工酶谱的分析中发现附加6-BA时,形成的愈伤组织存在着特有的酶带。     

铁线莲‘朱卡’组织培养技术及再生体系的建立

【目的】以铁线莲‘朱卡’(Clematis ‘Julka’)的带芽茎段为起始材料,通过组织培养方法建立再生体系。【方法】利用腋芽诱导—不定芽增殖—生根和愈伤组织诱导—增殖—分化—生根两种途径,建立该品种的组织培养再生体系,形成铁线莲‘朱卡’完整植株。【结果】铁线莲‘朱卡’组织培养最适宜灭菌条件为质量分数10%次氯酸钠溶液灭菌12min;带芽茎段诱导腋芽最适培养基为MS+NAA 0.1 mg/L+6-BA 1.0 mg/L,不定芽增殖最适培养基为MS+IBA 0.20 mg/L+6-BA 1.0 mg/L+GA₃ 0.2 mg/L;带芽茎段诱导愈伤组织最适培养基为MS+NAA 0.05 mg/L+6-BA 2.0 mg/L,愈伤组织增殖最适培养基为MS+NAA 0.20 mg/L +6-BA 2.0 mg/L,愈伤组织分化最适培养基为MS+NAA 0.03 mg/L+6-BA 3.0 mg/L;最佳生根培养基为1/2 MS+IBA 0.3 mg/L。【结论】首次用两种器官发生方法建立了稳定高效的铁线莲‘朱卡’再生体系。直接形成不定芽时增殖倍数可达5.52。诱导愈伤组织途径的器官发生中,愈伤组织分化率可达76.7%,分化不定芽平均数超过3。两种途径诱导生根率都在90%以上。     

安祖花的组织培养及快速繁殖研究

以安祖花的叶、叶柄和茎段为外植体在不同培养基上进行诱导愈伤组织和不定芽的发生．筛选出了诱导愈伤组织培养基MS 6—BA1．0mg／L 2，4—D0．5mg／L，不定芽分化及增殖培养基MS 6-BA1．0mg／L IBA0.1mg／L，不断的继代培养，增殖及分化率都很高，将产生的不定芽切割下来转接到1／2MS NAA0．5mg／L的培养基中生根壮苗，生根良好的试管苗移栽后，经过精心的管理。2个月后统计结果。成活率高达96％。     

绿豆下胚轴原生质体的培养

绿豆下胚轴原生质体的培养陈汝民，龙程，王小菁（华南师范大学生物学系广州５１０６３１）关键词绿豆下胚轴；原生质体；Ｂ５Ｐ１培养基；愈伤组织中图分类号Ｑ９４４．４６豆科植物在国民经济生活中占有重要位置，１９８０年高国输等人首先从豆科植物首清的叶片中分离和...     

裂叶秋海棠的离体快速繁殖

利用野生裂叶秋海棠叶片及叶柄培养，通过两种方式获得大量再生植株。(1)直接从外植体表面诱导出不定芽，最佳诱导培养基为MS 6-BA 3mg／L，不定芽在培养基MS NAA0．5mg／L 6-BA0．5mg／L增殖成丛生芽．(2)先诱导出愈伤组织，再由愈伤组织分化出大量不定芽．最佳愈伤组织诱导培养基为MS NAA0．5mg／L 2，4-D0．5mg／L 6-BA0．5mg／L,愈伤组织不定芽分化培养基为MS 6-BA 1mg／L,试管苗在含1／5MS无机盐的培养基上生根，之后移栽成活率达85％。     

薄荷固定化细胞培养产生薄荷醇

薄荷叶片外植体经诱导形成了颗粒状愈伤组织。愈伤组织转人附加８ｍｇ／Ｌ２，４－Ｄ的ＭＳ液体培养基以后，逐步成为小而分散的悬浮状态。将悬浮细胞和小愈伤组织用３％海藻酸酸钠固定，然后培养在附加０．５ｍｇ／Ｌ２，４－Ｄ的ＭＳ培养液中。     

芥菜原生质体培养和胚性愈伤组织的产生

以芥莱无菌苗下胚轴为材料游离获得原生质体,原生质体培养于含NAA1.5mg/l,6-BA0.6mg/l、和2.4-D0.5mg/l的DPD液体培养基中,约4—5周形成肉眼可见的小愈伤组织。转入MS固体培养基后,即可产生大量的愈伤组织,其中胚性愈伤组织约占50%以上。     

台湾相思的组织培养

以种子萌发无菌苗研究台湾相思的组织培养,结果发现子叶、下胚轴是诱导愈伤组织的理想外植体,最适培养基为MS BA2 2,4-D0.2 3%蔗糖,子叶及下胚轴诱导的愈伤组织在MS BA4 NAA0.2-0.4培养基中的出芽效果较好,子叶直接在MS 4-PU0.5培养基中诱导丛生芽效果最好,出芽率达90%,根诱导培养基为MS IBA2 NAA1,生根率为27.8%。     

甘蓝型油菜萝卜胞质不育恢复材料测交后代TC’1—1的下胚轴高频率植株再生因素的研究

作者研究了影响甘蓝型油菜萝卜胞质不育系恢复材料测交后代TC’1－1下胚轴高频率再生的若干因素,结果表明,在预培养中2,4－D对器官的发生具有很强的启动作用,AgNO3对芽苗分化有很强的促进作用,在MS附加6－BA 2mg/L NAA 0.5mg/L AgNO3 5mg/L的培养基中,获得了最高频率分化。     

冬小麦成熟胚愈伤组织诱导及分化

以4个冬小麦品种的成熟胚为外植体进行离体培养，研究了品种、不同激素组合以及不同预处理等因素对愈伤组织形成及分化的影响．结果表明，代表不同基因型的品种是影响离体培养的重要因素，成熟胚愈伤组织的诱导使用4mg／L的2，4-D浓度较为有利，在MS KT1mg／L 6-BA2mg／L培养基上分化率较高．低温及CaCl2预处理对成熟胚愈伤组织的影响与小麦品种有关．     

新几内亚凤仙离体快速繁殖技术研究

取新几内亚凤仙具有顶芽或腋芽的新生茎段为外植体，诱导芽体萌发，进行繁殖培养．通过大量试验，筛选出各阶段适宜的培养基组成．萌芽诱导阶段培养在MS 6-BA2．0mg／L NAA0．2mg／L中，顶芽萌发早，生长快；在继代和增殖培养中以MS 6-BA1．5mg／L NAA0．2mg／L培养基效果最好．1／2MS NAA0．2mg／L诱导生根，生根率可达100％．根质量较好；适宜条件下炼苗移栽．试管苗成活率缺95％以上。     

铁皮石斛的组织培养及快速繁殖

铁皮石斛的外植体在MS 6BA0.5 mg/L-2 mg/L NAA0.25 mg/L~0.4 mg/L或2,4-D0.25 mg/L培养基中能诱导分化丛生芽3~5倍。原球茎分化丛生芽10~15倍。壮苗后在1/2MS NAA0.2 mg/L~0.5mg/L诱导生根,生根率达90%以上。