生长调节剂对香石竹茎尖诱导形成芽的影响

将香石竹的茎尖作为外植体，分别接种于添加不同量细胞分裂素（６－ＢＡ或ＫＴ）及生长素（ＮＡＡ）的ＭＳ琼脂培养基上，结果表明，培养基中如果只添加６－ＢＡ或ＫＴ，当两者浓度分别在（０．０１－０．５）ｍｇ／Ｌ和（０．０１－１）ｍｇ／Ｌ时，对芽的产生起促进作用；在大于０．５ｍｇ／Ｌ和１ｍｇ／Ｌ时，则抑制芽的产生，培养基中同时加入ＮＡＡ和６－ＢＡ或ＫＴ，在ＮＡＡＲ 最小于６－ＢＡ或ＮＡＡ和ＫＴ时，利于芽的形成     

珍珠花丛生芽的诱导及生根条件的研究

诱导珍珠花（Ｓｔａｐｈｙｌｅａ ｂｕｍａｌｄａ ＤＣ）丛生芽的最佳培养基为ＭＳ基本培养基附加ＮＡＡ０．２ｍｇ．Ｌ＾－１和ＢＡ５ＭＧ．ｌ＾－１,无菌苗在１／２ＭＳ培养基中附加ＮＡＡ１ｍｇ．Ｌ＾－１、活性碳０．４５ｇ．Ｌ＾－１、硫胺素１ｍｇ．Ｌ＾－１、蔗糖２０ｇ．Ｌ＾－１能长根形成完整植株。     

四棱豆茎段离体培养的研究

通过茎段离体培养，实现了四棱豆的快速无性繁殖．结果表明：（１）用浓Ｈ２ＳＯ４将其种子处理８ｍｉｎ后再消毒接种可获得最高的发芽率；（２）在附加１．０ｍｇ／Ｌ６－ＢＡ的Ｈ培养基上，每粒种子平均可形成１３个丛芽；（３）在增殖培养阶段，ＩＢＡ浓度为１．０～２．０ｍｇ／Ｌ时对促进四棱豆离体茎段生根成苗的效果最为理想；（４）增殖培养阶段以采用Ｈ培养基的效果最为理想；（５）单独使用ＩＢＡ时，即使其浓度高达４．０ｍｇ／Ｌ也只诱导离体茎段生根，绝大多数外植体不会产生愈伤组织，只有极少数外植体产生少量愈伤组织；低浓度的６－ＢＡ（０．５ｍｇ／Ｌ）或高浓度的６－ＢＡ（２．０ｍｇ／Ｌ）配以低浓度的ＩＢＡ（０．２５ｍｇ／Ｌ）反而会引起大多数离体茎段的基部产生大量愈伤组织．     

大蒜鳞芽组织脱分化条件的分析与预测

以大蒜鳞芽基部组织为外植体，用二次回归通用旋转组合设计进行愈伤组织诱导研究。结果表明：培养基中附加的２，４－Ｄ、ＮＡＡ和６－ＢＡ三种激素中，２，４－Ｄ起决定作用，三者与愈伤组织诱导率之间的回归方程为：Ｙ＝６５．１２－１８．４７ｘ１－８．５６ｘ３－９．１７ｘ１２１６．６３ｘ２２－１２．１５ｘ３２经计算机模拟推测，最佳诱导培养基为：ＭＳ＋２，４－Ｄ０．９８ｍｇ／Ｌ～１．１４ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．９３ｍｇ／Ｌ～１．０９ｍｇ／Ｌ＋６－ＢＡ１．１９ｍｇ／Ｌ～１．３６ｍｇ／Ｌ。     

雪兔子叶的组织培养及植株再生

以雪兔子无菌苗的幼叶为外植体,接种到ＭＳ补加ＮＡＡ（１．０－２．０）ｍｇ／Ｌ、６－ＢＡ（０．１－１．０）ｍｇ／Ｌ的培养基上诱导愈伤组织,其中以ＭＳ＋ＮＡＡ２．０ｍｇ／Ｌ＋６－ＢＡ０．５ｍｇ／Ｌ的诱导效果最好,经６周培养即可形成大量的黄绿色愈伤组织,诱导率可达１００％,经２－３次继代培养后,将生长发良好的愈伤组织转接到ＭＳ附加６－ＢＡ（０．５－２．０）ｍｇ／Ｌ、ＩＡＡ（０．０５－０．１）ｍｇ／Ｌ、Ｎ     

虎眼万年青不同形态发生途径激素调控的初步研究

用虎眼万年青鳞片外植体在ＭＳ培养基上实现了不同形态发生途径的激素调控。结果显示，生长素和细胞分裂素两类激素的不同组合和浓度搭配都是影响形态发生途径的关键因素，甚至前者更为重要。就最佳激素组合和浓度搭配而言，ＮＡＡ０．５ｍｇ／Ｌ＋ＢＡ０．５ｍｇ／Ｌ和ＮＡＡ０．５ｍｇ／Ｌ＋ＫＴ０．５ｍｇ／Ｌ分别诱导体细胞胚和不定芽直接发生；２，４－Ｄ４．０ｍｇ／Ｌ＋ＢＡ１．０ｍｇ／Ｌ诱导愈伤组织；２，４－Ｄ０．１ｍｇ     

蕙兰CYMBIDIUM FABERI ROLFE种子无菌培养的研究

对蕙兰种子无菌培养过程的观察表明，其种子萌发先形成小球体，再由小球体发育成小苗，其途径有三条：一是由小球体经原球茎发育成小苗；二是小球体伸长成根茎后发育成小苗；三是小球体先形成根茎，在根茎四周分化出许多原球茎，再由原球茎形成小苗。低温预处理有利于种子萌发。种子萌发和小苗的形成需要生长素和细胞分裂素的适当配合，其中以ＭＳ＋６－ＢＡ０．５ｍｇ／１＋ＩＡＡ１．５ｍｇ／１对种子萌发最佳，苗生长以ＭＳ＋６－ＢＡ１．０ｍｇ／１＋ＮＡＡ０．５ｍｇ／１为好。液体振荡培养采用ＭＳ＋６－ＢＡ１．０ｍｇ／１＋ＩＡＡ１．５ｍｇ／１时，原球茎月增殖８－１０倍以上。     

正交设计法在白三叶组织培养中的应用

以白三叶的叶片为外植体,采用正交设计法,对愈伤组织生长和细胞悬浮培养的培养基进行了优化筛选。实验结果表明,白三叶叶片愈伤组织生长的最佳培养基配方为ＭＢ＋０．５ｍｇ／Ｌ ２,４－Ｄ＋０．２ｍｇ／Ｌ ＮＡＡ＋１ｍｇ／Ｌ ＢＡ＋２ｍｇ／Ｌ甘氨酸＋１００ｍｇ／Ｌ肌醇＋３％蔗糖＋０．７％琼脂;细胞悬浮培养的最佳培养基的配方为ＭＢ＋４ｍｇ／Ｌ ２,４－Ｄ＋０．２ｍｇ／Ｌ ＮＡＡ＋０．５ｍｇ／Ｌ ＢＡ＋２ｍｇ／     

骆驼刺高效离体植株再生体系的建立

通过对络驼刺（Ａｌｈａｇｉ ｐｓｅｕｄａｌｈａｇｉ Ｄｅｓｖ）不同外植体来源、不同培养基及激素配比的比较,建立骆驼刺培养高效再生植株实验体系。表明骆驼刺下胚轴切段在含１．５￣２．０ｍｇ／Ｌ２,４－Ｄ和０．５￣１．０ｍｇ／Ｌ ６－ＢＡ的ＭＳ培养基中１００％诱导愈伤组织,在含１．５ｍｇ／Ｌ ６－ＢＡ和１．０ｍｇ／Ｌ ＮＡＡ的ＭＳ培养基上愈伤组织分化成苗,转至含２．０ｍｇ／Ｌ ＩＢＡ和０．２ｍｇ／Ｌ ＮＡＡ的ＭＳ培养基上成根得到完整再生植株,组织学观察表明植株再生主要为器官发生途径,染色体稳定遗传。     

荞麦组织培养中的植株再生

用荞麦无菌苗的幼茎和幼叶作外植体分别接种在ＭＳ补加不同激素组合的培养基上培养获得再生植株。实验结果表明,适宜诱导愈伤组织的激素组合为２．４－Ｄ４．０ｍｇ／Ｌ＋ＫＴ０．２ｍｇ／Ｌ,适宜愈伤组织生长的激素组合为２．４－Ｄ１．０ｍｇ／Ｌ＋ＫＴ１．０ｍｇ／Ｌ。诱导芽的较适宜的组合为６－ＢＡ３．０ｍｇ／Ｌ＋ＩＡＡ０．１ｍｇ／Ｌ,不定芽接种到含ＭＳ＋ＩＢＡ２．０ｍｇ／Ｌ＋ＫＴ０．１ｍｇ／Ｌ的ＭＳ培养基上就能生     

菊花的离体培养

菊花的离体培养以ＭＳ＋ＮＡＡ０．５ｍｇ·Ｌ－１(单位,下同)＋ＢＡ５或ＭＳ＋ＮＡＡ ０．１＋ＢＡ２诱导愈伤组织,以ＭＳ＋ＢＡ２＋ＫＴ０．２分化芽丛及进行芽丛增殖,以１/２ＭＳ＋ＮＡＡ０．１生根培养,在基质椰糠:砂＝１:１中移栽成苗。也可在ＭＳ＋ＮＡＡ０．１＋ＢＡ ２诱导愈伤组织并直接形成芽丛,而后进行增殖培养。还可在增殖培养基中直接生根。     

红豆杉离体胚培养快速育苗研究

采用Ｂ５和ＭＳ相组合的ＢＭ基本培养基和适宜浓度的激素（２,４－Ｄ,６－ＢＡ和ＧＡ３）能解除红豆杉种胚的休眠．单因子试验和不同组合的正交试验结果显示：单独使用２,４－Ｄ０．１ｍｇ／Ｌ,６－ＢＡ２ｍｇ／Ｌ和ＧＡ３２ｍｇ／Ｌ均在一定程度上促使红豆杉种胚的萌发,萌发率分别为７０％,５５％和２８．６％;最佳正交组合为６－ＢＡ１ｍｇ／Ｌ＋２,４－Ｄ０．１ｍｇ／Ｌ＋ＡＣ４ｇ／Ｌ,萌发率达８１％．     

成年小鼠成纤维细胞体外培养

成年小鼠皮肤成纤维细胞可从尾部取材用组织块培养法进行原代培养,添加血清的M 199(E arle′s)和低糖的DM EM均能较好的满足原代细胞的生长.两种培养液中细胞增殖的速度无明显差异.用0.25%胰蛋白酶消化小鼠尾尖原代培养物,上皮细胞与成纤维细胞有明显的敏感度差别.经控温控时消化传代,可将上皮细胞与成纤维细胞分离纯化.     

生姜茎尖离体培养的研究

报道了生姜茎尖离体培养的研究结果．结果表明：初代及继代培养的基本培养基以Ｎ６为宜;ＫＴ对芽的增殖效果较佳;ＢＡ对芽没有明显的增殖效果,而且对芽的生长有毒害作用;ＫＴ５．０～７．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ０．５ｍｇ／Ｌ的激素配比对丛生芽的诱导效果较好,２５～３０ｄ可增殖３．３～３．９倍;０．５ｍｇ／Ｌ的ＮＡＡ和ＩＢＡ均能有效刺激试管苗生根,生根率高达１００％;表土是良好的移栽基质,成活率为９３．３％．     

荸荠茎尖培养体系的研究

以荸荠茎尖为材料,对茎尖诱导、分化、增殖的激素和激素浓度及培养方式进行了研究。试验结果表明:激素6-BA对茎尖有显著促进分蘖增殖芽的作用,KT和ZT无或少。6-BA 1.0～2.0 mg/L芽苗增殖数高于其它组合,叶状茎健壮。芽增殖培养方式以液体静态培养效果好,平均增殖系数2.6倍,周期短(25 d),叶状茎生长旺盛,有利于快繁体系的建立及工厂化生产应用。     

体外培养大鼠颅骨成骨细胞的生物学特性

应用机械和多步酶解的方法，从新生大鼠颅骨分离成骨细胞。偶氮染色法和钙钴法证明细胞的碱性磷酸酶活性呈阳性反应；Ｖｏｎ Ｋｏｓｓａ和钙分子探针Ｆｌｕｏ－３染色显示细胞节内有钙的沉积；电镜和倒置相差显微镜观察可见矿化结节及其形成过程；碱性磷酸酶性活性和骨钙素的动态分析提示这两种蛋白因子与成骨细胞分化与成熟的相关性。这一体外培养方法的建立，为骨的发育和成骨细胞生物学的研究提供了模型。     

白拉索蕾丽亚卡特丽亚兰叶片离体培养及形态发生的研究

以白拉索蕾丽亚卡特丽亚兰试管实生苗叶片为外植体，在改良的KC附加BA3－5mg/L培养基上获得原球茎，显微镜观察表明，原球茎起源于叶片表皮胚性化细胞，其发育成芽的过程与合子胚的发育过程相似。     

2种红豆杉的离体胚培养

建立了2种红豆杉的离体胚培养和植株再生系统.结果表明,4℃保存和流水冲洗能够在一定程度上破除红豆杉胚的休眠,不同培养基对种胚培养的影响没有明显的差别,经过低温处理的种胚萌发率由41.7%提高到69%,成苗率由33.3%提高到44.8%;流水冲洗预处理对种胚萌发也有促进作用,处理2 d后种胚的萌发率和成苗率都有明显的提高.     

桂花组织培养快繁体系的建立

以潢川金桂的嫩枝茎尖为外植体,进行离体培养与快速繁殖研究.结果显示:桂花嫩枝茎尖的最佳消毒处理为0.1%升汞处理2.5min;最适初代培养基为B5+2.5mg/L 6-BA+0.05mg/L NAA+3%蔗糖;最适继代培养基为B5+2.0mg/L 6-BA+0.05mg/L NAA+3%蔗糖;最适生根条件为1/2MS+2.0mg/L NAA+全黑暗处理;采用营养土为移栽基质.经过实验,发现桂花从一个茎尖到成苗移栽只需4个月左右的时间,30d时增殖系数达到2.08,移栽成活率高达82%.