落葵色素的提取及抗氧化活性初探

以成熟的落葵果实为材料,考察落葵色素的提取条件对其得率的影响以及色素抗氧化活性测定.落葵色素采用稀盐酸浸提,单因素试验考察提取温度、料液比、提取时间及提取次数对落葵色素的得率的影响,并检测p H值、光照、温度对色素稳定性的影响和落葵色素清除DPPH自由基的能力.结果表明:落葵色素的最佳提取条件为,温度45℃条件下按1∶10的料液比提取30 min,提取次数为2次;室温条件下,落葵色素在p H值为3~9之间较稳定,颜色呈紫红色和果实色泽一致;光照会使色素褪色,但在p H值为5~9之间时,耐光性最好;高温会加速色素分解,落葵色素具有相当的清除DPPH自由基能力.因此,落葵色素需低温避光保存,适宜弱酸性和中性条件下使用.     

超声波提取轮叶党参多糖工艺优化及抗氧化活性

以轮叶党参为试材,采用单因素试验和响应面法相结合的方法研究轮叶党参多糖提取的最佳条件,评价其体外抗氧化活性.结果表明:在超声功率138 W,超声时间14 min,超声温度35℃条件下,轮叶党参多糖的平均得率为12.48%;轮叶党参多糖CLPS1具有较强的抗氧化能力,对DPPH·,·OH,ABTS+有很好的清除能力,IC50分别为(3.04±0.35)mg/mL、(2.494±0.4)mg/mL和(3.41±0.59)mg/mL.     

藏红花花瓣粗多糖的体外抗氧化活性研究

采用水提醇沉法提取藏红花花瓣中的多糖,得率为3.75%.联合蒽酮-硫酸法和DNS法测得多糖纯度为68.34%.对粗多糖的体外抗氧化活性进行测定,结果表明,粗多糖具有一定的抗氧化活性,抗氧化能力指数(ORAC)值为0.572μmol TE/mg;其对ABTS+、DPPH和羟自由基具有一定的清除能力,半数清除浓度EC50分别为76.26μg/mL、165.5μg/mL和880.4μg/mL.     

金线莲多糖提取工艺优化及其体外抗氧化活性研究

以人工培育金线莲为原料，通过单因素试验考察液固比、提取温度、提取时间、超声波功率、提取次数5个因素对金线莲多糖得率的影响，并在此基础上选取液固比、提取时间及超声波功率3个因素为自变量，金线莲多糖得率为考察指标，采用响应面分析试验设计方法建立回归模型，以优化金线莲多糖提取工艺条件。结果表明，金线莲多糖最优提取工艺条件为：液固比30∶1(mL/g)、提取时间40 min、超声波功率240 W、提取温度60℃、提取次数2次，在此条件下金线莲多糖得率为8.14%，与预测值8.19%的相对偏差为0.61%。体外抗氧化实验结果表明，金线莲多糖对O_2-·自由基和DPPH自由基的清除作用与浓度呈正相关，其对O_2-·自由基和DPPH自由基清除率IC₅₀分别为0.744 mg/mL、0.665 mg/mL。金线莲多糖和VC还原力随着质量浓度增加而增大，但VC还原力增加的速度均高于金线莲多糖，表明金线莲多糖具有体外抗氧化活性，但抗氧化能力弱于VC。     

人参多糖提取工艺优化及体外抗氧化作用的研究

目的 通过优化人参多糖(Ginseng Polysaccharide)的提取工艺,探讨人参多糖的体外抗氧化能力.方法 应用水提醇沉法,在料液比、提取温度、提取时间、提取次数单因素试验的基础上,采用4因素3水平正交分析法优化人参多糖的提取工艺,同时对人参多糖的总抗氧化能力(FRAP法)、清除1,1-二苯基苦基苯肼自由基(DPPH·)和羟基自由基(·OH)的能力进行测定.结果 影响多糖得率的顺序依次为提取温度>料液比>提取时间>提取次数,此研究确定了人参多糖的最优提取工艺:提取温度60℃,料液比m(g):V(mL)=1:30,提取时间60 min,提取次数2次,在此条件下获得的最高得率为(9.87±0.35)％.人参多糖清除DPPH自由基的IC50值为7.58μg/mL,清除羟自由基的IC50值为145.72μg/mL.体外抗氧化结果 表明:人参多糖的总抗氧化能力、清除DPPH自由基和羟自由基的能力均强于相同浓度下水溶性维生素E,且呈剂量依赖性增加.结论 人参多糖具有较好的体外抗氧化能力.     

双酶提取蒲公英根多糖工艺优化及其抗氧化性研究

以蒲公英根烘焙粉为原材料,研究了酶添加量、酶解温度和酶解时间在单酶和双酶协同酶解条件下对多糖得率和DPPH自由基清除率的影响,并采用响应曲面法优化了酶解工艺参数。结果表明,单酶法提取1g蒲公英根多糖的适宜条件为:料水比(g∶mL)1∶30,纤维素酶酶解温度50℃,酶添加量1.0mL;木瓜蛋白酶酶解温度60℃、酶添加量2.0mL。双酶法多糖提取率高于单酶法,影响多糖得率的工艺因素主次顺序为酶解时间、酶解温度、酶添加量。适宜的多糖提取条件为:料水比(g∶mL)1∶30,木瓜蛋白酶悬液(200U/mL)添加量1.98mL,纤维素酶悬液(200U/mL)添加量0.99mL,55℃提取1.9h,此时多糖得率为32.97%±0.13%,DPPH 自由基清除率为92.31%±0.25%。烘焙和酶解工艺可提高蒲公英根多糖得率和DPPH自由基清除率。     

火龙果果皮总黄酮和多糖的提取工艺及抗氧化研究

考察提取时间、料液比、乙醇体积分数和提取温度对火龙果果皮总黄酮和多糖得率的影响. 并在单因素实验结果的基础上设计L₉(34)的正交实验,优化总黄酮和多糖的提取工艺. 此外,通过进行DPPH ·、ABTS自由基及·OH的清除实验,考察火龙果果皮提取物的抗氧化活性能力. 正交实验优化得出的提取时间3 h、料液比1 ∶ 30、乙醇体积分数70%、提取温度70 ℃为火龙果果皮总黄酮和多糖的最佳提取工艺. 该条件下提取到的火龙果果皮总黄酮和多糖的平均质量分数分别为7.87 mg/g和114.05 mg/g. 在373.44 μg/mL时,抗坏血酸对DPPH ·、ABTS自由基及·OH的最大清除率分别达到95.25%、99.57%、89.99%;而火龙果果皮提取物的最大清除率分别为88.64%、60.84%和61.77%,数据表明火龙果果皮提取物对自由基的清除率均达到对照品的2/3,证实火龙果果皮提取物具有良好的抗氧化活性能力,可作为天然抗氧化剂的提取原材料.     

响应曲面法优化野蔷薇根多糖的提取工艺及抑菌作用研究

利用响应曲面法优化野蔷薇根多糖的提取工艺,并对提取液进行抑菌活性研究。以野蔷薇根多糖得率为指标,采用单因素和响应曲面法对提取温度、提取时间、料液比和微波功率进行考察,优化最佳提取条件。采用平板打孔法和试管稀释法对野蔷薇根多糖进行抑菌实验。结果表明,野蔷薇根多糖的最佳提取工艺为提取时间22 min,微波功率317 W,提取温度81℃,料液比32:1 m L/g,实测的多糖得率为6.10mg/g,与模型理论值基本符合。野蔷薇根多糖对金黄色葡萄球菌、大肠杆菌、枯草芽孢杆菌、奇异变形杆菌都具有较明显的抑制作用。模型可较好地预测野蔷薇根多糖的得率,响应面法对野蔷薇根多糖提取条件参数优化具有可行性。     

不同提取方法对姬菇多糖抗氧化活性的影响

本研究采用传统水提法、超声波提取法、超声波辅助水提法、酸提法、碱提法、超声波辅助酸提法和超声波辅助碱提法7种方法提取姬菇多糖,测定还原力、羟自由基(·OH)清除率、超氧阴离子自由基(O_2~-·)清除能力、DPPH自由基清除力作为体外抗氧化作用的评价指标,并与Vc对照.结果表明酸法提取多糖得率最高,可达6.58%.总体来看,超声波辅助水提法所得姬菇多糖的抗氧化活性最好,多糖浓度为10 mg·m L~(-1)时其还原力达到2.18,·OH清除率为95.56%;多糖浓度为1 mg·m L~(-1)时,O_2~-·的清除率达到62.35%;多糖浓度为2 mg·m L~(-1)时,对DPPH自由基的清除率达到80.32%.超声波辅助碱提法所得多糖的抗氧化活性也较好,而超声波辅助酸提法所得多糖的抗氧化活性最差.由此可见,采用超声波辅助水提法所得多糖有利于姬菇多糖生物活性方面的研究.     

鹅毛玉凤花总多糖提取工艺优化及抗氧化活性研究

本研究以药用植物鹅毛玉凤花(Habenaria dentata)的块茎为材料,在单因素试验的基础上,选取提取时间、料液比和提取温度进行响应面试验,优化鹅毛玉凤花总多糖的提取工艺,并通过测定总多糖的DPPH自由基(DPPH·)清除率、羟基自由基(·OH)清除率、超氧阴离子自由基(O₂^-·)清除率和总还原力,探究鹅毛玉凤花的体外抗氧化活性。结果表明,鹅毛玉凤花总多糖的最佳提取条件为提取时间7 h,料液比1∶58.7 (g/mL),提取温度73.49℃,优化验证后的鹅毛玉凤花总多糖得率为9.59%,相对标准偏差(RSD)为0.13%。抗氧化试验结果表明,鹅毛玉凤花总多糖对DPPH·、·OH、O₂^-·的半抑制浓度(IC₅₀)分别为1.385 mg/mL、0.006 mg/mL和0.020 mg/mL,其总还原力是L-抗坏血酸的2.24%,表明鹅毛玉凤花总多糖具有较好的抗氧化能力。     

柱层析循环联合法提取双刺参胶囊中的总皂苷及多糖

探索柱层析循环法联合提取双刺参胶囊中总皂苷及多糖的工艺条件,并对总皂苷体外活性进行研究.以提取液中总皂苷及多糖提取率为指标,通过对提取溶剂、吸涨率、浸泡平衡时间、洗脱流速等因素的考察确定提取的最佳工艺.结果显示,总皂苷及多糖提取溶剂分别为40%乙醇溶液和纯水、吸涨率分别为3.8 mL·g－1和3.6 mL·g－1、浸泡平衡时间均为2 h、接样速率为0.4 mL·min－1.在此条件下,总皂苷及多糖经过2轮连续提取,提取率均在95%以上,浸膏中总皂苷及多糖的含量分别为18.05%和48.37%.体外抗氧化试验表明,双刺参提取物具有一定的抗氧化能力.利用柱层析循环联合法提取总皂苷及多糖,提取温度低、乙醇用量少、能源消耗低、方法简单,为双刺参胶囊的进一步研究奠定了基础.     

蛹虫草菌丝体胞内多糖提取方法的研究

文中以提取温度、料液比、提取时间和提取次数为因素,采用正交试验研究热水浸提的最佳提取条件,并以此为基础研究热水浸提、冷热交替浸提、盐酸溶液浸提和氢氧化钠溶液浸提对蛹虫草菌丝体胞内多糖提取率的影响. 结果表明:热水浸提的最佳提取工艺为:m(料): V(液) = 1: 40,提取温度75 ℃,提取时间2.5 h,提取2次,多糖的提取率为14.74%,其中料液比为影响多糖提取率主要的因素,其他因素依次是提取温度、提取时间和提取次数. 按照此工艺,热冷交替浸提(热水浸提2.5 h + 冷水浸提48 h)多糖提取率最高,为15.92%. 55 g.L-1的氢氧化钠溶液浸提多糖的提取率为6.31%;25 gL-1的盐酸溶液浸提多糖的提取率为9.93%. 因此,冷热交替浸提对蛹虫草菌丝体胞内多糖提取率最高,其次是热水浸提、盐酸溶液浸提和氢氧化钠溶液浸提.     

响应面法优化玉竹多糖表面活性剂协助提取条件

单因素实验中考察多种表面活性剂的浓度、提取温度、提取时间、料液比(体积与质量比)以及提取次数对玉竹多糖产率的影响。在此基础上,利用表面响应分析法优化表面活性剂协助提取玉竹多糖的条件,研究提取温度、提取时间及料液比3个自变量之间的交互作用对多糖得率的影响,并得到最佳提取条件为:提取温度92℃,提取时间1.61h,料液比19.93mL/g,此条件下玉竹根茎中多糖产率预测达到11.11%(质量分数)。     

酶法提取方格星虫多糖的条件及优化

【目的】确定胰蛋白酶酶解法提取方格星虫(Sipunculus nudus)体壁中水溶性多糖的最优条件。【方法】分别从料液比、浸提温度、浸提时间、浸提pH值、酶底比等5个方面进行了初步研究。研究分为两部分进行,先确认提取方法中各单因素的最优条件,再根据单因素试验结果选取4个主要因素(料液比、浸提温度、浸提pH值、酶底比),进行四因素三水平的正交试验,得到方格星虫水溶性多糖水提法的最佳组合。【结果】正交试验结果表明:对方格星虫多糖提取率影响最大的为浸提温度,其次是pH值和料液比,影响最小的为酶底比。最佳浸提条件为:温度60℃、pH值8.0、料液比1∶12g·mL-1、酶底比为2.0%、时间3h。【结论】在最优浸提条件下,方格星虫水溶性多糖酶提法所得的最佳提取率为1.59%。此方法高效稳定可行,能有效提高方格星虫的多糖提取率。     

方格星虫多糖水法提取的条件及优化

分别从料液比、浸提时间、浸提次数、浸提温度等4个方面初步研究水法提取方格星虫体壁中的水溶性多糖的条件及优化.在单因素试验结束后,通过正交试验取四因素三水平得到方格星虫水溶性多糖水提法的最佳组合.结果：影响方格星虫多糖提取率的主次顺序为浸提温度＞料液比＞浸提时间＞浸提次数,最佳的浸提条件为：温度100℃,料液比1∶12 g/mL,浸提时间3h,浸提次数4次.在最优浸提条件下,方格星虫水溶性多糖水提法所得的最佳提取率为1.22％.该工艺稳定可行,能有效提高方格星虫多糖的提取率.     

方格星虫多糖碱法提取工艺研究

【目的】研究碱法提取方格星虫体壁中水溶性方格星虫多糖的条件及优化。【方法】根据料液比、浸提时间、浸提温度、碱液浓度对多糖得率的影响,并通过正交试验得到方格星虫水溶性多糖浸提工艺优选因素组合。【结果】影响方格星虫多糖得率的因素主次顺序为浸提温度料液比浸提时间碱液浓度;最佳浸提条件为温度50℃,料液比1∶6g/mL,时间4h,碱液(NaOH)的质量分数为8%。【结论】最佳浸提工艺条件下多糖浸提提取率最大为1.81%。     

米糠多糖的提取及其含量的测定

对米糠中的多糖进行提取与测定,采用水提醇沉法对米糠中的多糖进行提取,并采用苯酚—硫酸法测定其多糖含量,以正交实验优化显色条件。确定检测波长为490nm,确定6%苯酚用量为1.0mL,浓硫酸用量7.5mL,反应时间为30min。在(0.0025—0.030)mg/mL范围内,呈良好的线性关系。平均回收率为97.8%,RSD=3.89%(n=6)。测得米糠粗多糖含量为20.2%。结果表明方法简单、准确,为继续研究开发提供一定的参考依据。     

半仿生及超声波辅助半仿生法提取杜仲叶黄酮

探讨半仿生法及超声波辅助半仿生法提取杜仲黄酮的实验条件.半仿生法考察提取温度、提取时间、料液比对黄酮提取率的影响.以半仿生法提取在超声波协同作用的基础上,采用正交试验、单因素考察超声时间、超声温度、料液比对黄酮提取率的影响.结果表明,半仿生法在提取时间1.5 h,提取温度60 ℃,料液比1∶20（g∶mL）时,黄酮提取率高达325.0 mg/g;超声波辅助法提取的最佳条件为时间50 min,温度65 ℃,料液比1∶40（g∶mL）,黄酮提取率为264.4 mg/g.