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娜托百合的组织培养和离体快繁 总被引:2,自引:0,他引:2
以娜托百合的鳞茎及幼茎为外植体成功获得再生植株,并建立了快速无性繁殖系.外植体的最佳芽诱导培养基是MS 0 2~0 5mg/LNAA 0 05~0 8mg/LBA;MS 0 2~0 5mg/LNAA 0 8~2 0mg/LKT;芽的最佳增殖培养基为MS 0 05~0 4mg/LIAA 0 05~0 4mg/LKT;MS 0 1~0 5mg/LBA 0 05~0 5mg/LNAA;芽的最佳增壮培养基和根诱导最佳培养基为MS 0 05~0 8mg/LNAA 0 05~1 0mg/LKT. 相似文献
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东方百合组织培养和快速繁殖研究 总被引:39,自引:0,他引:39
以元帅百合 (Acapulco)的盘茎为外植体成功获得再生植株 ,并建立快速无性繁殖系 .鳞片的最佳芽诱导培养基是MS 0 2~ 0 8mg/LKT 0 0 5~ 0 5 0mg/LNAA ;芽增殖最佳培养基是MS 0 10~ 0 5 0mg/LIAA ;根诱导最佳培养基为 12 MS 0 0 5~ 0 10mg/LNAA ;最佳移栽基质是腐殖土、珍珠盐、蛭石粉的配比基质 . 相似文献
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通过对生菜下胚轴的愈伤诱导和植株再生的研究 ,发现诱导愈伤组织时 ,MS培养基中加 0 .5mg/L 6 BA 1mg/L 2 ,4 D 0 .1mg/LNAA效果最好 ,其出愈率达 94 %;愈伤组织分化为芽时 ,在MS 1.0mg/L 6 BA 0 .0 5mg/L NAA中分化频率最高 ,达 10 0 %.再生苗可在 1/ 2MS 0 .5mg/L NAA中诱导生根成完整植株 . 相似文献
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应用组织培养和快速繁殖技术对最适大花蕙兰培养的培养基、激素、培养主式、培养基质进行了筛选 .研究结果表明 ,在改良MS培养基 +2 .0mg/L 6 -BA的诱导下有利于原球茎的增殖和分化 ;改良MS培养基 +0 .3mg/LNAA有利于试管苗的生根 ;在腐殖土∶棉子壳 =3∶2 (体积比 )下移栽的成活率最高 . 相似文献
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葶苈子植物愈伤组织诱导及植株再生的研究 总被引:4,自引:0,他引:4
对葶苈子植物 :葶苈 (Drabanemorosa)、印度菜 (Rorippaindica)及北美独行菜(Lepidiumvirginicum)愈伤组织的诱导、分化、再生苗的生根进行了研究。结果表明 :(1)在基本培养基为MS ,附加 6 -BA 0 .5mg/L +NAA0 .5mg/L的培养基上三种植物均能产生愈伤组织 ,其出愈率达 10 0 % ,而且 2 0 %的外植体具有一次成苗的能力 ;(2 )在愈伤组织的分化中 ,6 -BA1mg/L +NAA 1mg/L的激素组合是最佳的 ,其分化率为 10 0 % ;(3)无根苗生根的培养基为MS + 0 .5mg/LNAA ,生根率为 90 % 相似文献
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以大理百合的鳞片为外植体进行离体培养,获得再生植株,并初步建立起快速繁殖体系.结果表明:大理百合鳞片适宜诱导芽和愈伤组织的培养基MS+0.5mg/LBA+0.1~0.5mg/LNAA+3%蔗糖;增殖培养基为MS+0.5mg/LBA+0.05~0.1mg/LNAA+4.5%蔗糖;生根结鳞茎培养基为1/4MS+0.01mg/LNAA+6%蔗糖+10mg/LCCC. 相似文献
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本文以延安村团枣多年生檀株上当年的新生枝条为试验材料,进行离体培养.结果表明;用MS及MS 2mg/L6BA两种培养基诱导致密型愈伤组织的频率较高.MS培养有利于愈伤组织的分化.MS 0.5mg/LNAA及MS 1mg/L NAA两种培养基可促进腋芽和顶芽的萌发与生长.MS 0.5mg/L NAA则可以诱导离体幼芽生根.比较粗壮的枝条及顶梢是组织培养的全适材料. 相似文献
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以组织培养获得的宜兴百合小鳞茎为试验材料,研究了不同基本培养基、NAA与6-BA的配比、矮壮素(CCC)、2,4-D、活性炭、蔗糖及悬浮培养方法对小鳞茎增殖和膨大的影响.结果表明,最佳诱导培养基为MS培养基,有利于提高分化率的最佳配方为:MS+0.15mg/LNAA+2.0mg/L6-BA,小鳞茎膨大增重的最佳培养基为:MS+0.15mg/LNAA+2.0mg/L6-BA+0.1mg/L CCC+6—8%蔗糖,培养方式为液体振荡培养优于固体培养. 相似文献
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樱桃番茄的组织培养与离体快繁研究 总被引:5,自引:1,他引:4
以樱桃番茄(L.Esculutum v.Cerasiforme)的下胚轴、幼叶、茎尖及带芽茎段为外植体,在附加不同浓度BA和LAA的MS培养基上进行离体培养,结果表明:樱桃番茄“红宝石”品种的下胚轴、叶和茎尖的最佳芽诱导培养基分别为MS 2.0mg/L BA 0.5mg/LIAA;MS 2.0mg/L BA 0.2mg/LIAA;MS 1.0~2.0mg/L BA 0.1~0.5mg/LIAA。芽最佳增殖培养基MS 1.0mg/L BA 0.5mg/LIAA,其增殖系数为3~4,用带侧芽的无菌短枝进行离体扦插,可1次成苗,扦插培养基为MS 0.005~0.010mg/LNAA或不加激素,其增殖系数可达5。 相似文献
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高羊茅高频再生体系的建立 总被引:1,自引:0,他引:1
目的建立高频再生体系,为相关基因的转化提供良好的受体系统。方法以高羊茅(Fes-tuca.arundinacea)成熟种子为外植体,以MS为基本培养基,进行高羊茅胚性愈伤组织诱导、继代、分化及生根培养。结果初生愈伤组织在MS 2,4-D5 mg/L CH400 mg/L 蔗糖60 g/L 琼脂12 g/L的继代培养基诱导出体细胞胚后,在含6-BA2.0 mg/L NAA0.5 mg/L的MS培养基上分化形成丛生苗,分化率达78.9%;再生苗在1/2 MS NAA0.5 mg/L生根培养基上生根,生根率达100%。结论MS 2,4-D 9 mg/L为最佳愈伤组织诱导培养基,MS 6-BA 2.0 mg/L NAA 0.5mg/L为最佳分化培养基,1/2 MS NAA0.5 mg/L为最佳生根培养基。 相似文献
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兰州百合和野百合组织培养及快速繁殖研究 总被引:42,自引:1,他引:42
以兰州百合(Lilium davidii Var.Unicolor (Hoog)Cotton)和野百合(Lilium brownii F.E.Brown ex Miellez) 鳞茎及叶片为外植体获得再生植株,并建立起快速无性繁殖系。兰州百合鳞茎的最佳诱导培养基为MS+0.6-1.0mg/LBA+0.2mg/LNAA;芽增殖培养基选MS+0.5-0.6mg/LBA 0.1mg/L NAA;生根培养基为1/2MS+0.2mg/l IAA 0.1%活性炭。野百合鳞茎及叶的最佳诱导培养基分别为MS+0.1-0.5mg/LBA 0.1-0.2mg/L NAA或0.5mg/L IAA和MS+0.7mg/L BA 0.07mg/L NAA;鳞茎诱导的芽的增殖培养基为MS+0.2-0.4mg/L BA 0.1mg/L NAA;生根培养基为1/2MS+0.15mg/L NAA 0.1%活性炭。 相似文献
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本文以长春花无菌苗的芽为外植体进行组织培养。适合芽诱导和增殖的培养基为MS+0.50mg/L6-BA+0.06mg/LIBA+300g/L蔗糖+7g/L琼脂;适合生根的培养基为1/2MS,0.10mg/LIBA+0.20mg/LNAA+30g/L蔗糖+7g/L琼脂。经生根壮苗培养和炼苗25d后,移栽成活率高达92%。 相似文献
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研究了离体条件下甜叶菊(Stiuia rebaudiana Bertoni)叶片愈伤组织诱导和植株再生技术,离体培养以MS为基本培养基并附加300mg/L水解酪蛋白,离体叶片在BA 0.5mg/L和NAA 0.5mg/L的培养基上诱导形成愈伤组织,在BA 0.5mg/L和NAA0.05mg/L的培养基上可诱导愈伤组织分化不定芽,分化频率为100%,不定芽在White基本培养基并附 加NAA0.01mg/L的培养基上诱导生根,生根率可达100%,炼苗后移栽,成活率达95%以上。 相似文献
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千屈菜的组织培养及再生体系建立的研究 总被引:1,自引:1,他引:0
以千屈菜的嫩茎为材料,进行了愈伤组织的诱导和分化、不定芽分化、试管苗生根、移栽、扦插和移植的研究,成功建立起千屈菜的无性系.结果证明:MS+BA0.2mg/L+2,4-D0.8mg/L和1/2MS+BA0.2mg/L+2,4-D0.8mg/L是诱导培养嫩茎愈伤组织的理想培养基;MS+AgNO31.0mg/L+BA0.6mg/L+NAA0.2mg/L是嫩茎愈伤组织分化培养的理想培养基;MS+BA0.5mg/L+NAA0.1mg/L是不定芽分化继代培养的理想培养基;1/2MS+IAA0.2mg/L是试管苗生根培养和生根继代培养的理想培养基;炉灰渣是试管苗移栽和扦插的理想基质;移植到花坛上的试管苗生长旺盛,根系增加1倍左右. 相似文献
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沙枣的各种外植体在 B_5+0.2mg/l IBA+3mg/l KT 的培养基上进行组织培养;20天后可分化出大量再生芽,待长至0.3~0.5cm 时,转入 MS 培养基上,可形成完整的再生植株.在试验时,把再生芽分别转入含0、0.3、0.5、0.8、1.0(%)NaCl 的 B_5培养基中培养,发现在0.3%NaCl 下生长分化良好.随着 NaCl 含量的提高,再生芽分化率、生长率均下降。 相似文献
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将凤尾兰花瓣接种于MS基本培养基上,培养基附加2.4—D0、5mg/l、NAA0.5—1mg/l、6—BA2mg/l、水解乳蛋白500mg/l及蔗糖3%诱导愈伤组织的形成。MS培养基附加6—BA2mg/l,NAA0.5mg/l及蔗糖3%诱导愈伤组织分化。值得注意的是在培养过程中,花瓣小片以及愈伤组织的颜色有几次转变。在愈伤组织上首先分化出小根,逐渐分化出小苗。 相似文献