唐古特白刺愈伤组织诱导及再生体系的研究

以唐古特白刺(Nitraria tangutorum Bobr.)子叶、下胚轴、根为外植体, 接种在不同浓度激素配比的培养基中, 研究愈伤组织的诱导及植株再生.结果表明: 子叶和下胚轴是诱导愈伤组织的良好外植体; 以MS补加2,4-D(0.5～1.0 mg·L-1)或6-BA(1.0～2.0 mg·L-1)+NAA(0.5～1.0 mg·L-1)可100%高频产生愈伤组织;在MS+6-BA 2.0 mg·L-1+NAA 0.5 mg·L-1培养基上,下胚轴可产生不定芽; 最佳增殖培养基为MS+6-BA 0.5 mg·L-1+NAA(0.5～1.0 mg·L-1),增殖系数为5.75; 最佳生根培养基为1/2 MS+IBA 0.5 mg·L-1,生根率达94.6 %.     

凝视星空百合的组织培养及快繁体系的建立

以凝视星空百合的鳞茎为外植体获得再生植株,成功建立了快速无性繁殖系.凝视星空百合的最佳芽诱导培养基是MS+0.2 mg·L-1 NAA+0.8 mg·L-1BA(或0.5 mg·L-1 NAA+0.8 mg·L-1KT);芽的最佳增殖培养基是Ms+1.5 mg·L-1IAA+0.1 mg·L-1 KT;芽的最佳增壮培养基为MS+0.05～0.8 mg·L-1 NAA+0.05～1.0 mg·L-1 KT.     

紫苏离体再生体系的建立

以紫苏种子为材料,进行紫苏离体再生研究。试验结果表明:紫苏种子先用75%酒精处理30s,再用0.1%HgCl2消毒剂处理8min,在MS培养基上种子萌发率为43%;最佳不定芽诱导培养基为MS+0.5mg.L-1 NAA+3.0mg.L-1 6-BA;最佳增殖培养基为MS+0.1mg.L-1 NAA+2.0mg.L-16-BA;最适生根培养基为MS+0.2mg.L-1NAA,生根率达96.4%;移栽的成活率为74%。     

芦笋组培快繁技术优化的研究

利用芦笋杂交F1代种子获得无菌植株,取无菌植株的茎尖、茎段作为外植体,在不同培养基上诱导、增殖和生根,筛选出适宜的诱导培养基为MS 6-BA1.0 mg·mL-1 NAA0.1 mg·mL-1,增殖培养基为MS 6-BA0.5 mg·mL-1 NAA0.1 mg·mL-1,生根培养基为1/2MS IBA1.0 mg.mL-1 KT0.02 mg·mL-1.利用3～5 mm长的芽进行生根培养,生根率最高达到91.7%,炼苗成活率达到90%以上.     

新台糖25号组织培养及快速繁殖研究

本研究采用新台糖25号蔗株茎尖培养出绿苗和茎梢嫩叶诱导出愈伤组织,再分化出绿苗的方法,快速成功培育出了大批量绿苗.试验表明茎尖培养用MS 6-BA2.0mg·L-1 NAA0.3mg·L-1附加活性炭0.05%;MS 2,4-D1.0～3.0mg·L-1对诱导愈伤组织效果较佳,MS 6-BA1.0mg·L-1 KT1.0mg·L-1 NAA0.3mg·L-1对分化绿苗及其增殖效果最好;生根培养基选用1/2MS IBA1.0mg·L-1 NAA1.0mg·L-1,附加活性炭0.05%效果好.     

激素水平对三角紫叶酢浆草组织培养的影响

以三角紫叶酢浆草丛生芽和叶片为外植体,研究不同激素水平对三角紫叶酢浆草组织培养的影响,探讨三角紫叶酢浆草快速繁殖的最佳途径。研究结果表明:叶片不定芽诱导初期的最佳培养基是MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.2mg/L;丛生芽增殖的最佳培养基为MS+6-BA1.0mg/L+IBA0.2mg/L+KT0.5mg/L;生根最佳培养基为1/2MS+NAA0.2m g/L。     

山银花的组培快繁和种质离体保存研究

以山银花(Lonicera confusaDC.)嫩茎段为外植体,研究不同培养基(MS、1/2MS、1/3MS、N68、White)和植物生长调节剂(6-BA、IBA、NAA、2,4-D、BR)对其诱导、分化和增殖的影响,建立山银花的快速繁殖再生体系,并探讨在温度15～20℃条件下,不同保存培养基(MS、1/2MS、1/4MS)对种质离体保存的影响。结果表明:山银花嫩茎段分化能力较强,在培养基MS 6-BA0.5mg·L-1 IBA0.1mg·L-1上培养7d腋芽开始萌发,15d时的诱导率达到90%;以N68为基本培养基,附加6-BA0.4mg·L-1和IBA0.4mg·L-1能较好地促进芽的伸长和增殖,避免叶片发黄脱落,每30d的增殖倍数为5.0倍;生根培养基以1/2MS IBA0.2mg·L-1最好,培养30d时生根率达95%;以单株芽段为离体保存材料,在1/2MS 蔗糖20g.L-1培养基上培养30d后无菌条件下加入0.5mg·L-1硝普钠溶液,继代间隔期可以延长至180d。     

金银花(Lonicera Japonica Thunb.)愈伤组织的诱导和分化

以金银花的茎、叶片、芽为外植体,在70个不同浓度IAA、NAA、6-BA组合的MS培养基上进行愈伤组织诱导,分析了金银花的快速繁殖体系的培养条件,发现芽是金银花组织培养的最佳外植体,IAA和NAA的最佳浓度均为1 mg·L-1,6-BA的最适浓度为0.1 mg·L-1,确定适宜的初代培养基为 MS 6-BA 0.1 mg·L-1 NAA 1 mg·L-1,诱芽培养基为MS 6-BA 0.1 mg·L-1 NAA0.02 mg·L-1.     

圆叶椒草叶片组织培养研究

以圆叶椒草的叶片为外植体,研究不同激素浓度组合对圆叶椒草愈伤组织的诱导、不定芽分化、丛生芽生长及生根的影响.实验结果表明,愈伤组织诱导和芽分化的最适培养基为MS+6-BA 2.0mg·L-1+NAA 0.2mg·L-1,丛生芽生长的最适培养基为MS+6-BA 2.5mg·L-1+NAA 0.25mg·L-1;生根的最适培养基为MS+NAA 0.1mg·L-1,试管苗移栽后成活率为100%.     

益母草愈伤组织分化及无性系建立的研究

以益母草根颈为材料,进行了愈伤组织诱导、增殖与分化,分化芽生根,试管苗移栽、定植的研究.结果表明：MS＋6-BA 0.5mg·L-1＋NAA 0.6mg·L-1＋2,4-D1.2mg·L-1是愈伤组织诱导培养的理想培养基;MS＋6-BA0.5mg·L-1＋NAA0.1mg·L-1＋2,4-D 1.5mg·L-1是愈伤组织继代增殖培养的理想培养基;1/2MS＋6-BA 0.2mg·L-1＋NAA 0.1mg·L-1是愈伤组织分化培养和分化芽继代分化增殖培养的理想培养基;N6＋IAA0.2mg·L-1培养基是益母草分化芽生根培养的理想培养基.移栽成活率为94.4%;定植成活率为99.1%;定植成活的试管苗保持野生益母草的所有植物学性状.     

铁线莲‘朱卡’组织培养技术及再生体系的建立

【目的】以铁线莲‘朱卡’(Clematis ‘Julka’)的带芽茎段为起始材料,通过组织培养方法建立再生体系。【方法】利用腋芽诱导—不定芽增殖—生根和愈伤组织诱导—增殖—分化—生根两种途径,建立该品种的组织培养再生体系,形成铁线莲‘朱卡’完整植株。【结果】铁线莲‘朱卡’组织培养最适宜灭菌条件为质量分数10%次氯酸钠溶液灭菌12min;带芽茎段诱导腋芽最适培养基为MS+NAA 0.1 mg/L+6-BA 1.0 mg/L,不定芽增殖最适培养基为MS+IBA 0.20 mg/L+6-BA 1.0 mg/L+GA₃ 0.2 mg/L;带芽茎段诱导愈伤组织最适培养基为MS+NAA 0.05 mg/L+6-BA 2.0 mg/L,愈伤组织增殖最适培养基为MS+NAA 0.20 mg/L +6-BA 2.0 mg/L,愈伤组织分化最适培养基为MS+NAA 0.03 mg/L+6-BA 3.0 mg/L;最佳生根培养基为1/2 MS+IBA 0.3 mg/L。【结论】首次用两种器官发生方法建立了稳定高效的铁线莲‘朱卡’再生体系。直接形成不定芽时增殖倍数可达5.52。诱导愈伤组织途径的器官发生中,愈伤组织分化率可达76.7%,分化不定芽平均数超过3。两种途径诱导生根率都在90%以上。     

除虫菊组织培养的研究

以除虫菊嫩叶和茎段为外植体,研究了除虫菊的诱导愈伤组织、诱导出芽、诱导生根以及移栽技术.结果表明:以培养基MS+2,4-D1.0mg/L+KT 0.8mg/L诱导愈伤组织、MS+6-BA2.0mg/l+NAA0.1mg/L 诱导长芽、1/2MS+NAA0.05mg/L诱导生根,诱导效果较满意,移栽成活率达86%.     

叶用莴苣组织培养研究

以叶用莴苣(LactucasativaL)栽培品种的幼嫩叶片为实验材料,对叶用莴苣的组织培养进行了研究,探讨愈伤组织的形成、愈伤组织分化成芽和生根的条件.结果如下6BA和NAA的浓度影响叶用莴苣愈伤组织的形成、分化和生根培养,诱导愈伤组织的最适培养基为MS+6BA(0.5mg/L)+NAA(0.1mg/L),最适分化培养基为MS+6BA(0.5mg/L)+NAA(1.0mg/L),最适生根培养基为1/2MS+NAA(0.1mg/L).     

食用药百合组织培养及其多倍体诱导研究

对食用药百合进行了组织培养和多倍体诱导研究。以百合的鳞片和正在生长的茎尖作为外植体,采用MS培养基作为基本培养基,设置不同浓度激素研究组织培养快繁的最佳方法;在离体培养条件下,初步比较了不同浓度的秋水仙素处理百合的诱变效果。结果表明：在温度25±2℃,光照15h/d,光照强度2000lx,培养基中加蔗糖30g/L、琼脂8g/L、pH5.8培养条件下,鳞片诱导的最适培养基为MS＋6-BA1.5mg/L＋NAA0.2mg/L,茎尖不定芽诱导的最适培养基为MS＋6-BA1.5mg/L＋NAA0.1mg/L,生根的最适培养基为1/2MS＋KT0.1mg/L＋NAA0.2mg/L;0.05%的秋水仙素处理12h诱变效果最佳,诱变率高达40%。     

滴水珠组培快繁的实验研究

目的:通过滴水珠组织培养及快速繁殖,解决滴水珠的资源匮乏问题。方法:以滴水珠的珠芽和叶片及叶柄为外植体,进行愈伤组织诱导、愈伤组织分化、丛生芽的增殖、生根诱导及组培苗的移栽研究。采用酸性染料比色法测定滴水珠愈伤组织中总生物碱的含量。结果:滴水珠组织培养的最佳外植体为叶片,在MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L的培养基上可以较好地诱导出滴水珠的愈伤组织,滴水珠愈伤分化及丛生芽增殖的最适培养基为MS+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.25 mg/L,生根诱导最适培养基为1/2MS+NAA 0.25 mg/L。在培养基中添加100g/L的香蕉汁具有促进滴水珠丛芽增殖及生根的作用。滴水珠愈伤组织中的总生物碱含量为0.784 8%。结论:初步建立了完整的滴水珠的组织培养体系,并成功移栽。     

菠萝蜜的组织培养

选取经资源调查及品质分析后获得的优良植株的顶芽和腋芽为材料，诱导腋芽的萌发和不定芽增殖生根．结果表明：从3月下旬到5月上旬是菠萝蜜组织培养大田取材的最佳时间，该时期接种材料污染率（〈50％）及褐变率（〈5％）均较低；启动培养的培养基最佳组合是MS＋6-BA2．0mg／L＋KT1．0mg／L＋GA。0．5mg／L＋蔗糖20g／L，腋芽诱导率为44．6％，KT含量较高（1．0mg／L）有利于腋芽的诱导，诱导率平均为（40％）；不定芽增殖培养的培养基最佳组合是MS＋6-BA1．5mg／L＋KT0．1mg／L＋GA。0．5mg／L＋蔗糖40g／L，增殖率为2．61，蔗糖含量较高（40g／L）有利于不定芽的增殖，增殖率平均为2．34；生根培养以1／2MS＋IBA1．5mg／L＋NAA0．2mg／L最好，接种8d开始生根，生根率15．8％，15d根长3～4cm，平均根数3～4条．     

贴梗海棠组培快繁技术研究

对贴梗海棠的外植体进行了愈伤组织和植株再生体系研究．结果表明,带芽茎段为最适外植体;诱导芽的最适培养基为Ms＋6-BA1．0mg／L＋NAA0．2mg／L芽生长培养基为MS＋6-BA2．0mg／L＋NAA0．2mg／L;在1／2MS＋NAA0.3mg／L培养基上,生根率为90％．     

藏橐吾的组织培养

为有效利用藏橐吾Ligularia rumicifolia(Drumm.)S.W.Liu资源,以其子叶为外植体进行离体培养研究.结果发现,诱导愈伤组织的适宜培养基为MS+TDZ 1.0 mg/L+NAA 1.0 mg/L,诱导愈伤组织产生不定芽的适宜培养基为MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L,诱导率为69.56%.诱导子叶产生不定芽的适宜培养基为MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.8 mg/L,诱导率为72.33%.不定芽在1/2 MS+IAA 0.5 mg/L的培养基中生根率为70.00%.     

黄花蒿叶片植株再生体系的建立

以黄花蒿叶片为材料,设计离体培养不同阶段的培养基配方.通过对培养结果进行观察、统计分析,结果表明:MS 2,4-D(2.0mg/L)对叶片诱导愈伤组织效果最好;MS 6-BA(1.0mg/L)为丛生芽分化培养基的适宜配方;无菌苗在MS NAA(0.05mg/L)的培养基上生根效果良好.     

耐盐碱刺槐离体再生快繁体系的建立与优化

为提高耐盐碱刺槐的快繁效率,满足沿海及滨海盐碱地区绿化要求,以耐盐碱刺槐无性系"W009"和"W038"为试材,研究不同条件对耐盐碱刺槐试管苗分化和生根的影响.结果表明:两刺槐茎尖初代接种不定芽萌发率均好于茎段,"W009"离体茎尖不定芽萌发的最适培养基为MS+6-BA 0.5 mg·L~(-1)+NAA 0.05mg·L~(-1),茎段不定芽萌发的最适培养基为MS+6-BA 1.0mg·L~(-1)+NAA 0.1mg·L~(-1);而适合"W038"离体茎尖和茎段不定芽萌发的最适培养基则为MS+6-BA 1.0mg·L~(-1)+NAA 0.1 mg·L~(-1);适合"W009"不定芽增殖的培养基为MS+6-BA 1.0mg·L~(-1)+NAA 0.05mg·L~(-1),"W038"不定芽增殖的培养基为MS+6-BA 2.0mg·L~(-1)+NAA 0.1 mg·L~(-1);"W009"最适生根培养基为:1/2 MS+0.1 mg·L~(-1) IBA+0.2mg·L~(-1) NAA+1.0g·L~(-1)活性炭;"W038"最适生根培养基为:1/2 MS+0.3 mg·L~(-1) IBA+0.2 mg·L~(-1) NAA+1.0g·L~(-1)活性炭.