洋葱染色体G带和R带的研究

本文报道了洋葱(Allium cepe)根尖染色体G带和R带的研究结果。本试验采用秋水仙碱前处理,用纤维酶及果胶酶去壁,用蒸气干燥法制片,应用胰酶—尿素法进行显带。结果诱导出洋葱根尖细胞染色体的两种清晰的染色质带。因两种带纹着色深浅的部位正好相反,正如人类染色体显示的G带和R带,因此我们称之为洋葱染色体的G带和R带。洋葱染色体的G带和R带在同一分裂相中每条染色体均显示带纹,带纹分布于整条染色体上,与C带带纹显然不同。     

菜粉蝶G带核型的初步研究

观察了雄菜粉蝶生殖细胞细胞分裂的染色体，并对其Ｇ带核型进行了研究。染色体制片采用涂片法，Ｇ带显示采用尿素法。结果表明：２ｎ＝５０，染色体上无明显的着丝粒，有丝分裂早中期染色体上显示了较为清晰的带纹，依据染色体的相对长度和Ｇ带带纹，排出了Ｇ带核型。     

黄果西番莲染色体G—显带和G—带带型

用正红花油（ＲＦＯ）去壁，Ｇｉｅｍｓａ染色法对黄果西番莲的染色体进行了Ｇ－显带研究和Ｇ－带带型分析。结果表明，全部９对染色体（２ｎ＝１８）均显示出清晰的丰富的Ｇ－带带纹，但各条染色体的带纹数目随着有丝分裂时期的推进而逐渐减少，前期带纹数量多，早中期次之，中期最少或无带；各对同源染色体的两个成员之间带纹的位置、数目、大小、着色深浅和带间宽窄，彼此基本相似，可较准确配对，而非同源染色体之间的带型特征则     

高粱染色体G—显带核型的研究

本文报道了高粱染色体Ｇ—显带核型的研究．实验结果表明，供试材料有丝分裂早中期相的每条染色体均显示多重的Ｇ—带带纹．根据带纹着色深浅和粗细，可分为两种不同类型的带纹，即深色粗带和浅色细带．在同源染色体之间，带纹特征及其数目相同，而在非同源染色体之间，则互有差异．本文对高粱染色体的核型和染色体Ｇ—带带型进行了分析，并对Ｇ—显带在高粱核型分析及其它研究中的应用、ＡＳＧ显带方法等问题进行了讨论．     

人类染色体R显带法改良初探

应用改良的Ｒ显带方法进行染色体显带,结果表明：染色体能及时显带,带纹清晰、丰富,其方法稳定、简便、易于识别、重复性佳．     

高梁染色体G—显带核型的研究

本文报道了高梁染色体Ｇ－显带核型的研究，实验结果表明，供试材料的有丝分裂早中期相的每条染色体均显示多重的Ｇ－带带纹，根据带纹着色深浅和粗细，可分为两种不同类型的带纹，即深色粗带和浅色细带，在同源染色体之间，带纹特征及其数目相同，而在非同源染色体之间，则互有差异，本文对高梁染色体的核型和染色体Ｇ－带带型进行了分析，并对Ｇ－显带在高梁核型分析及其它研究的应用，ＡＳＧ显带方法等问题进行了讨论。     

泽蛙(Rana l.limnocharis)染色体高分辨带型初步分析

本文用简化的高分辨显带方法,直接将5——溴脱氧尿嘧啶核苷(Brdu)注射到泽蛙体内,替代胸腺嘧啶脱氧核苷(TdR)渗入正在复制的DNA中,干扰染色体三级结构,使染色体伸长,从而获得了大量带纹清晰、丰富的早中期、中期染色体,并成功地进行了高分辨带型分析。结果和衡红强等、赵亚力用外周血淋巴细胞培养制备的黑斑蛙,绿臭蛙染色体高分辨带型一致。     

长爪沙鼠1～5号染色体G显带特征初步研究

目的　通过易于区分的 1～ 5号长爪沙鼠染色体G显带特性研究 ,逐步建立完整的长爪沙鼠G带染色体细胞遗传学背景资料。方法　取 6只成熟长爪沙鼠 ,雌雄各半 ,采用外周血进行淋巴细胞培养 ,获得分裂中期细胞染色体标本制片 ,以胰蛋白酶处理 ,选 1周龄标本染色观察。结果　长爪沙鼠染色体指数表明 ,1～ 5号染色体以相对长度、着丝点位置易于排列。 1号染色体与 2号染色体各有八条深染带纹 ,可以着丝点位置加以区分。 3号染色体有六条深染带纹 ,位于着丝点附近和长臂与短臂中部无穷侧端。 4号染色体与 5号染邑体均有四条深染带 ,5号染色体短臂深染带纹位于着丝点一侧可予以区分。结论　长爪沙鼠 1～ 5号染色体有较稳定的基本深染G带型 ,可做为染色体区带划分的重要标界。     

一种改良的C—显带教学实验方法

细胞核是细胞的三大结构(细胞核、细胞膜系统、细胞骨架系统)之一,对它的实验观察主要是细胞核型实验观察分析和染色体亚结构的实验观察分析,即染色体的显带。染色体的显带技术当前采用的方法有①压片和酸、碱、盐溶液抽提;②滴片和酸、碱、盐溶液抽提。这些方法都能显现染色体的亚结构——染色体上的深浅不同的带纹。但明显的不足的地方是带纹反差小,图象质量差,实验周期长,整过实验历时近10天(学生要两次实验才能完成)。这与现在课时     

两种鱼的复制带显带研究

采用活体直接注射ＢｒｄＵ的方法,对黄颡鱼和鲶鱼的染色体复制带进行了研究．结果发现,采用ＢｒｄＵ－Ｈｏｅｃｈｓｔ－Ｇｉｅｍｓａ方法,获得了这两种鱼的复制带图像,带纹清晰稳定．复制带可分早、中、晚三个时期,从早期到晚期,带纹逐渐减少;常染色质早复制,异染色质晚复制,复制中期可看到着丝粒区、端粒区和居间区,其中特别是ＮＯＲｓ处浅染．根据试验结果,对鱼类染色体的复制带特征进行了讨论     

二花脸猪的染色体分析

以二花脸猪为材料，采用外周血淋巴细胞短期培养及Ｇ－带、Ｃ－带和银以技术，对其体细胞染色体进行了分析研究。结果表明，二花脸猪二倍体细胞染色体数目为２ｎ＝３８。对１８对常染色体和１对性染色体。在Ｇ－带带型中，虽然不同细胞在带纹宽窄或染色强度上呈现出一定变化，但就每一对同源染色体而言，则都有其特殊的带型。在Ｃ－分带中，１号、１３－１８号染色体着丝粒区域呈强阳性，且范围较大，１６、１７和１８号同源染色体间     

The Karyotypes,C-banding Patterns and AgNORs of Epinephelus malabaricus

0　IntroductionThestudyonfishchromosomeswasstartedabroadinthethirtiesofthetwentiethcentury .Butduetoimperfectfixedmethodsandtechniques ,determinationwasstronglysubjective ,inadditionfishchromosomesbeingmuchsmallerthanthoseofhumanspeciesandothermammals ,plantsandinsects ,thereliabilityofearlyresearchresultswasratherdeviated .Afterthefifties ,thepreparation ,observationmethodsandtechniquesofhumanchromo someswereconstantlyimproved ,andin 1 970s ,variouschromosomebandingtechniqueswereestablished .…     

大蹄蝠的核型、G-带和C-带研究

研究了大蹄蝠的核型、G -带和C -带。大蹄蝠的染色体数目是 2n =3 2 ,NF =60 ,No .8染色体上有一明显的次缢痕。大蹄蝠有丰富的结构异染色质 ,主要以着丝粒带的形式存在 ;且有若干染色体部分或全部异染色质化。     

湖侧褶蛙及阿尔泰林蛙的核型、C-带、银带研究

本文报道了产于新疆伊犁的湖侧褶蛙(Pelophylaxridibunda)及阿尔泰地区的阿尔泰林蛙(Ranaaftaica)的核型、C-带、银带。产于中欧的湖侧褶蛙的第8、11号染色体是中部着丝粒染色体,而且几乎每条染色体都有端粒区C 带,在一些染色体上还有居间区C带;而产于新疆伊犁河谷的湖侧褶蛙的第8号染色体是亚端部着丝粒染色体,第11号染色体是亚中部着丝粒染色体,只有着丝粒区C-带,没有端粒区和居间区C-带。本文认为这种染色体核型上的差异是同种不同地域种群的染色体多态现象。阿尔泰林蛙与田野林蛙的第6号染色体均为中部着丝粒染色体,本文认为两者同是欧洲林蛙群2n=26与亚洲2n=24的林蛙群的过渡种类。     

中国松亚属三个种的C—带核型研究

报道了中国起源的松属三个种的胰酶—吉姆萨C—带核型.马尾松、油松、黄山松的中间带分别为34,24,24条,着丝粒带分别为18,20,20条,而对于一条染色体臂来说,最多出现一条或二条中间带.所有带纹的形态相似.而大小各异.在同一有丝分裂相中,中间带到着丝粒的距离相等(在仅出现一条带的臂上).三个种C—带在分布上的主要区别是:马尾松有一条染色体不显任何带,而油松和黄山松所有染色体均显带.     

草绿异色蝗的染色体C-带核型

报道了珍稀昆虫草绿异色蝗ＤｉｍｅｒａｃｒｉｓｐｒａｓｉｎａＮｉｕｅｔＺｈｅｎｇ）的染色体Ｃ－带核型．该种蝗虫（副模１）的核型为２ｎ＝２２＋ＸＯ，，全部染色体为端部着丝粒染色体，Ｃ带主要分布在着丝粒区，３号染色体具有端带，５号染色体Ｃ带带纹非常丰富     

家蚕染色体的C-带及其扫描电镜的初步研究

以家蚕早期胚为材料，对有丝分裂染色体进行了C-带的研究以及扫描电镜的观察．结果表明大多数分裂相都显示染色体上有C-带，其中4条染色体上常有C-带深染；性染色体中Z染色体亚端部普遍显示有C-带．表明家蚕染色体C-带可能属于非着丝粒型C-带，与其弥散型着丝粒理论相辅．     

毛腿鼠耳蝠的核型、G-带和C-带研究

使用肺、心脏等进行组织培养,用空气干燥法制作染色体标本,对毛腿鼠耳蝠(Myotis fim briatus)进行核型、G-带和C-带型分析:毛腿鼠耳蝠2n=44,有3对大型中着丝粒染色体,一对小型中着丝粒染色体,染色体总臂数(N.F)为52;常规核型和G-带核型与已发表的该属中华鼠耳蝠(M.chinensis)、西南鼠耳蝠(M.altarium)等物种一致,说明了该属动物核型具有相当的稳定性;C-带核型有丰富的端位C-带,具有一定的特殊性。     

C-banding pattern and nucleolar organizer regions of Cynoglossus semilaevis Günther, 1873

The C-banding pattern and nucleolar organizer regions of the metaphase chromosomes of Cynoglossus semilaevis are reported. The interstitial regions in all chromosomes including the pair of sex chromosomes had positive C-bands, and the 6th and 12th pairs of chromosomes were entirely stained in most cases. Some chromosomes such as the 1st, 2nd, 7th, 8th, 9th and 10th pairs showed C-bands at centromeric or distal ends. The C-banding heretochromatin occupies 30.03% of the total chromosome surface in C. semilaevis, which is similar to that of amphibians such as Mixophyes fasciolatus (30. 2% ) and M. schevilli (20. 7% ), but is rather lower than that of cephalochordate Branchiostoma belcheri (54. 3 % ). Silver staining revealed a single pair of nucleolar organizer regions ( NORs) located in the telomeric regions of Chromosome 2. The association of NORs with heterochromatin observed in vertebrates also occurs in C. semilaevis as the telomeric regions of Chromosome 2 are always stained positively with C-banding.     

C-banding pattern and nucleolar organizer regions of Cynoglossus semilaevis Günther, 1873

The C-banding pattern and nucleolar organizer regions of the metaphase chromosomes of Cynoglossus semilaevis are reported. The interstitial regions in all chromosomes including the pair of sex chromosomes had positive C-bands, and the 6th and 12th pairs of chromosomes were entirely stained in most cases. Some chromosomes such as the 1st, 2nd, 7th, 8th, 9th and 10th pairs showed C-bands at centromeric or distal ends. The C-banding heretochromatin occupies 30.03% of the total chromosome surface in C. semilaevis,which is similar to that of amphibians such as Mixophyes fasciolatus (30.2%) and M. schevilli (20.7%), but is rather lower than that of cephalochordate Branchiostoma belcheri (54.3%). Silver staining revealed a single pair of nucleolar organizer regions (NORs) located in the telomeric regions of Chromosome 2. The association of NORs with heterochromatin observed in vertebrates also occurs in C. semilaevis as the telomeric regions of Chromosome 2 are always stained positively with C-banding.