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矮牵牛的组织培养及快速繁殖的研究 总被引:3,自引:0,他引:3
以矮牵牛叶片、茎尖、茎段为外植体进行组织培养 ,成功获得再生植株 ,并建立了快速无性繁殖体系 ,增殖培养基为MS + 6BA2 (mg/L) +NAA0 1(mg/L) ,生根培养基为 1/ 2MS +NAA0 0 5mg/L 相似文献
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矮牵牛别名“碧冬茄”、“灵芝牡丹”、“杂种撞羽朝颜”、系茄科的多年生草本花卉,通常作一年生栽培。矮牵牛由于种子极其微小,用掺砂法撒播不易掌握播种密度和出苗数量,给播种后的抚育管理带来不便,且易发生病害。多年实践经验显示,条播是一种既能克服上述缺点,又省工、省时、可靠性强,容易掌握,值得推广应用的方法。 相似文献
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类黄酮3′,5′羟基化酶(Flavonoid 3′,5′-hydroxylase,F3′,5′H)是花色素苷代谢途径中的一个关键酶,它使花色素的合成方向趋向于形成蓝色色素翠雀素。利用PCR方法,从“紫蓝色”品系的矮牵牛(Petunia hybrida)总DNA中,克隆到编码F3′,5′H的Hf1、Hf2基因。将Hf2基因正向插入到植物表达中间载体中,通过土壤农杆菌介导的方法转化“淡粉色”品系的矮牵牛。现已得到PCR阳性植株。 相似文献
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以矮牵牛为实验材料进行组织培养,采用带芽茎段和叶片作为外植体,利用单因子实验比较不同质量分数的6-BA对矮牵牛带芽茎段及叶片的初代培养的影响.实验结果表明,最适培养基均为MS+2.5 mg/L 6BA+0.2 mg/L NAA. 相似文献
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何开跃 《南京林业大学学报(自然科学版)》2002,26(1):88-88
选择矮牵牛为开花生理的实验材料 ,研究了开花过程中的生理指标变化 ;对花色基因序列进行比较 ,分析开花的基因蛋白 ,设计了低密度和高密度开花基因芯片的探针 ,并将基因芯片应用于基因表达研究中。把矮牵牛开花过程分为 5个时期 :未出现花芽 (第一期 )、出现花芽 (第二期 )、出现花蕾 (第三期 )、刚刚开花 (第四期 )和花盛期 (第五期 )。选择了 3种颜色的矮牵牛 :粉红色、杂色和红色。在刚刚出现花芽的第二期时 ,3种花的核酸含量明显升高 ,粉红色花在刚刚开花的第四期又出现一个核酸含量的高峰。红色花和杂色花中DNase比活力呈下降趋… 相似文献
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为了建立紫红花和紫花矮牵牛诱导不定芽途径,以这两种矮牵牛为材料,在MS基本培养基基础上,添加不同浓度的6-BA和IBA激素,共设计了9种培养基组合,对两种花色矮牵牛叶片进行快繁研究.试验结果表明:不同品种矮牵牛快繁的激素组合是有差异的,紫红花矮牵牛叶片诱导不定芽的最适培养基为MS4-1.0mg/L6-BA4-0.2mg/LIBA,紫花矮牵牛叶片诱导不定芽最适培养基为MS+2.0mg/L6-BA+0.5mg/LIBA.为今后以紫红花和紫花矮牵牛为受体进行遗传转化获得转基因植株的无性快繁建立有效再生体系. 相似文献
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利用病毒诱导的基因沉默(VIGS)机制可以从基因组序列入手来进行植物基因功能研究, 这是一种反向遗传学方法. 本室曾成功利用中国番茄黄化曲叶病毒(TYLCCNV)的卫星DNA构建了基因沉默的载体. 本研究对该载体进行了改良, 在本氏烟上对Su基因的沉默测试表明, 改良后的载体与原载体诱导沉默的效率没有差别, 但是改良后的载体构建沉默克隆的过程得以简化. 进一步用改良后的沉默载体分别抑制矮牵牛内源基因Su和CHS基因的表达. 含Su基因的沉默载体接种矮牵牛大约2周后, 矮牵牛沿叶脉开始黄化; 含CHS基因的沉默载体接种矮牵牛约1个月后, 新开的牵牛花上出现花色的褪变, 并由单色花变成了杂色花. 相似文献
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矮牵牛花瓣发育过程中花色素苷、还原糖及蛋白质含量的变化 总被引:20,自引:1,他引:19
将矮牵牛花冠的发育分为5个时期。研究各时期花瓣中花色素苷、还原糖及蛋白质含量的变化,结果表明:花刚开放时,花色素苷、还原糖含量最高;花瓣发育过程中花色素苷的生成与还原糖含量的变化趋势一致。所选3种花色中,紫色花瓣的花素苷含量最高。 相似文献