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991.
给出了一元及多元覆盖系CS(Covering Systems)的概念及性质,定义了k模n元CS阵,并证明了子块定理。 相似文献
992.
从分泌抗人红细胞单克隆抗体的杂交瘤细胞3F5中提取总RNA,逆转录成cDNA,用合成的寡核苷酸引物通过PCR扩增和克隆单抗的轻、重链可变区基因,用双脱氧核苷酸链终止法分析核苷酸序列,采用PCR拼接法构建单链抗体基因,并插入原核表达载体PEt-28a,转化大砀杆菌BL21(DE3),经IPTG诱导后表达,序 分析表明所克隆的VL、VH分别属于鼠IgKappa轻链IV亚组和Ig重链Ⅱ亚组,VH、VL基 相似文献
993.
994.
995.
Cloning and expression analysis of human reticulon 4c cDNA 总被引:2,自引:0,他引:2
996.
Proteome analysis technology has been used extensively in conducting discovery research of biology and has become one of the
most essential technologies in functional genomics. The proteomes of the human hepatoma cell line BEL-7404 and the normal
human liver cell line L-02 have been separated by high resolution two-dimensional gel electrophoresis (2-DE) with immobilized
pH gradient isoelectric focusing (IPG-IEF) in the first dimension and sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis
(SDS-PAGE) in the second dimension (IPG-DALT). The resulting images have been analyzed using 2-D analysis software. Quantitative
analysis reveals that 7 protein spots are detected only in hepatoma BEL-7404 cells, 14 only in L-02 cells, and 78 protein
spots show significant fluctuation in quantity in both cell lines (P< 0.01). These protein spots have been displayed on a proteome differential expression map. Analysis for the reproducibility
of 2-DE indicates that the positional variability in the IEF dimension is 0.73 mm, while the variability in the SDS-PAGE dimension
is 0.44 mm, and the quantitative variability is 17.6%–19.2%. These results suggest that the reproducibility of 2-DE has been
suitable for the study of differential expression of proteomes. Proteome differential expression maps can be useful tools
for disease diagnosis, drug-target validation analysis and biological process elucidation. 相似文献
997.
998.
原核表达载体pHsaE1αβ的构建和人丙酮酸脱氢酶的表达与纯化 总被引:1,自引:1,他引:0
以质粒pQE9为原型载体, 将编码hPDH的α和β亚基的cDNA串联克隆到该载体上,
成功地构建了hPDH基因的表达载体pHsaE1αβ. 并在大肠杆菌中表达了hPDH, 通过
亲和层析法进行纯化, 对一些生物化学性质进行表征. 相似文献
999.
为了获得高纯度的可溶性NF-κB相互作用多肽,首先以酵母双杂交技术筛选获得的NF-κB相互作用多肽的酵母表达质粒pGAD GH/pp10为模板,扩增多肽基因片段,后经BglⅡ,StuⅠ双酶切后连接到pET-42a(+)载体中,构建GST/多肽融合蛋白的原核表达载体,并将GST/多肽融合蛋白的原核表达载体转化入BL-21菌株,用0.4 mmol/L IPTG于30 ℃诱导表达4 h,后经GST亲和纯化GST/多肽融合蛋白,SDS-PAGE电泳鉴定融合蛋白的表达和纯度.实验结果表明,成功地构建了NF-κB相互作用多肽的GST/多肽融合蛋白原核表达载体,进行了GST/多肽融合蛋白的诱导表达,融合蛋白的表达为可溶性表达,最终纯化获得纯度约为80%的可溶性GST/多肽融合蛋白,这将为后继利用GST pull-down,Bio-sensor,EMSA等实验进一步验证NF-κB相互作用多肽的功能提供可靠的材料来源奠定基础. 相似文献
1000.