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11.
HPLC—ELSD法测定麦角固醇和光化学异构体   总被引:1,自引:0,他引:1  
为测定麦角固醇和维生素D2及其他光化学异构体,研究确定了HPLC-ELSD测定的色谱分离条件:Kromasil C18柱(4.6×250 mm,5 μm),流动相为体积比95:5甲醇-水溶液,流速1.3 ml/min,蒸发光散射检测器漂移管温度为75℃,气体流量1.6 L/min.在此条件下,各组分得到有效地分离,麦角固醇和维生素D2色谱峰面积的自然对数与浓度的自然对数呈良好的线性关系(r>0.997),精密度RSD为1.89%~2.75%.最低检测限为0.05~0.1μg,回收率测定值为101.4%~102.8%.  相似文献   
12.
生物合成麦角甾醇酵母菌株选育   总被引:1,自引:0,他引:1  
采用24株不同种属的酵母菌进行发酵培养,研究其麦角甾醇的生物合成,并筛选Yeg一14菌株为实验菌。以玉米粉水解液为碳源,尿素(NH2)2CO为氮源,通过两步深层发酵工艺路线,研制麦角甾醇酵母。  相似文献   
13.
研究了酵母以蔗糖为废物发酵生产麦角固醇的动力学模型:菌体生长模型.拟合值和实验值之间的平均相对误差13.5%;底物庶糖消耗动力学模型.拟合值和实验值之间的平均相对误差9.88%;麦角固醇合成动力学模型:拟合值和实验值之间的平均相对误差9.0%.  相似文献   
14.
探索从青霉素菌丝体中提取麦角固醇以及纯化的方法,并进行条件的优化.实验证明:以麦角固醇含量为1.2%的青霉素湿菌丝为原料,使用浓度为15%的NaOH溶液,物料比1:15,在温度为85℃条件下皂化2h,选择乙醇作为萃取剂进行萃取,是从青霉素菌丝体中提取麦角固醇的最优方法.选择碱性蛋白酶对粗提产品进行酶解,最佳酶解条件为:温度45℃,时间2h,加酶量2.0%,pH为8.在该酶解条件下麦角固醇纯度可达到70%,提取率为95%.  相似文献   
15.
高产麦角固醇酵母菌种的选育研究   总被引:4,自引:0,他引:4  
采用群体杂交法、完整细胞与原生质体诱变法和诱变与杂交结合等方法选育高产麦角固醇酵母菌种,经实验表明:单倍体诱变与杂交结合的方法是选育含麦角固醇、遗传性能稳定的酵母菌株的有效方法之一。在原生质体诱变中发现:第一次再生的原生质体麦角固醇含量很低,而随着再生次数的增加,麦角固醇的含量将逐渐上升。  相似文献   
16.
啤酒酵母M05-37变株合成生物活性物质的培养条件研究   总被引:1,自引:0,他引:1  
经诱变获得了一株高产谷胱甘肽(GSH)、多糖和麦角固醇的甲硫氨缺陷型(Met^-)变株——啤酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)M05—37。该变株经培养基和培养条件优化后(蔗糖蜜为碳源,酵母粉和(NH4)2SO4为氮源,最适pH5.5~6.0,最适温度28~30℃),其活性物质的生物合成能力得到显著的提高。每100mL发酵液含GSHl0.78mg,胞外多糖34.24mg,麦角固醇2.20mg,分别比出发株提高79.36%,58.07%和44.76%。  相似文献   
17.
IntroductionCeramides,simple sphingolipids,exist ineukaryotic cells either as free molecules or as thebackbone of all sphingolipid molecules. Asstructural components they are mostly localized inthe plasma membrane,contributing to membraneproperties such as increased rigidity and thestability of the lipid bilayer[1] .Their hydrophobicnature provides a hydrophobic environment for theoptimal activity of membrane- related enzymes andproteins. These molecules are redistributed acrossthe membrane bi…  相似文献   
18.
麦角固醇连续光转化生产维生素D2新工艺   总被引:6,自引:0,他引:6  
本研究使用一种自制的新型高效紫外光源,对麦角固醇生产维生素D2(简称VD2)进行了连续式光反应器的工业化规模放大实验,并对反应条件进行了优化,得到了较好的结果。最终麦角固醇转化率为60%以上,VD2 选择性得率为65%以上。与以往工艺相比较,连续式光反应器具有效率高、易于工业化放大的优点。这必将显著的降低生产成本。  相似文献   
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