RTP硅太阳电池的研究进展

用快速热处理(RTP，Rapid Thermal Processing,)制备太阳电池p—n结开辟了一种新的低成本技术。这些年许多科研机构对RTP系统的设计、RTP快速扩散模型、RTP制作器件做了深入的研究。文章主要介绍了RTP快速扩散模型和回顾了RTP硅太阳电池的发展过程，提出了RTP硅太阳电池研究的一些发展方向。     

仙客来(Cyclamen Persicum Mill)胚性愈伤形态和组织结构的动态观察

用仙客来（Cyclamen persicum Mill)成苗叶柄作为外植体，培养在附加2，4－D和KT的1／2MS培养基上诱导体细胞胚性愈伤组织的发生，对体细胞胚性愈伤组织发生过程中外部形态和组织细胞学结构进行了 动态观察。结果表明，叶柄组织发化的起始部位在维管束的维管束鞘细胞，启动时间是培养后2d；叶柄外植体培养至20d左右，愈伤组织呈松散透明状态，胚性细胞出现，标志着进入胚性愈伤组织阶段，胚性细胞多发生在所形成的愈伤组织的表层或近表层细胞，细胞大而壁薄，与非胚性细胞联系疏松，细胞核大，并位于细胞中央，细胞质浓厚，分别观察有单细胞、二分体和四分体状态。     

杂交瘤细胞的无血清低蛋白培养

实现了杂交瘤细胞的体外无血清低蛋白培养。考察了血清浓度、基础培养基和接种密度对细胞生长的影响。在含5%血清培养基、1%血清培养基和无血清低蛋白培养基中适应生长的细胞,μ分别为0.68、0.45、0.44d-1,qGlc分别为13.4×10-9、13.1×10-9、19.2×10-9mmol/(cell·分别为39.4×10-9、44.1×10-9、37.7×10-9mg/(cell·d),YMAb/Xv分别为52.6×10-9、d),qMAb57.8×10-9、54.4×10-9mg/cell,YLac/Glc分别为2.0、1.95、2.0mmol/mmol。无血清培养中葡萄糖代谢途径不变,参与细胞维持代谢的葡萄糖比例增大。血清浓度降低,延迟期变长,最大活细胞密度下降。基础培养基影响细胞的最大活细胞密度,不影响生长速率。无血清培养基中细胞的接种密度选择在0.2×106～0.3×106cells/mL。     

底物限制对杂交瘤细胞生长、代谢和单抗生成的影响

考察了葡萄糖或谷氨酰胺限制的批培养中杂交瘤细胞的生长、代谢和单抗生成。葡萄糖或谷氨酰胺限制时最大活细胞密度基本相同,为(1.0±0.1)×106cells/mL。葡萄糖限制时,乳酸生成减少,YLac/Glc降低,YCell/Glc增加,提示葡萄糖更多地参与三羧酸循环。谷氨酰胺限制时,氨和丙氨酸生成减少,YAmm/Gln增加,YAla/Gln减小,提示谷氨酰胺的能量利用率提高。谷氨酰胺缺失时异亮氨酸、亮氨酸、胱氨酸、缬氨酸、色氨酸、组氨酸等替代谷氨酰胺,维持细胞生长和单抗合成,产物是甘氨酸和天冬氨酸。单抗生成与细胞生长关联,并且细胞停止生长后单抗仍生成。细胞死亡阶段的qMAb约是生长阶段的一半。葡萄糖和谷氨酰胺共限制下细胞对单抗的生产能力比葡萄糖和谷氨酰胺单独限制时小。     

人参果试管快繁和脱毒技术的研究

将茎尖接种与MS 6-BA0．5—1．0mg／L IAA0．2mg／L的培养基，形成丛生芽，将丛生芽切块接种于MS IAA0．2mg／L的培养基上，形成幼苗，经检测，得到无病毒植株。再通过切断扦插于MS IAA0．2mg／L上生根，得到大量脱毒试管苗。     

脑干听觉诱发电位波形分析建模、验证与算法优化

脑干听觉诱发电位是声觉器官受刺激后产生的一种生物电，反映了相应感觉通路及神经元群的活动，可用作听力阈值的客观判断，也可对多种耳疾和脑部病变作出诊断，因而成为当今临床医学和生物医学信号处理中的一个重要课题．文中介绍了脑干听觉诱发电位潜伏期（Ｌ）与刺激声强（Ｉ）之间关系曲线的作用，及其拟合建模和回归算法优化，还用实测数据对选定的拟合曲线模型进行了回归方差分析验证．     

计算机仿真技术对双螺杆动态模拟的研究

利用计算机仿真技术对双螺杆进行动态模拟仿真研究，讨论了双螺杆在啮合运动过程中的关键技术及本动态模拟软件实现过程中的几个重要问题。     

密度梯度离心法检测脱落肿瘤细胞对恶性胸腔积液的诊断价值

胸腔积液是临床常见征象，其良恶性质的临别是临床上尚未解决的难题之一。本试验对３６例恶性胸腔，３０例结核性胸腔积液分别用密度梯度离心法，常规离心涂片法检测脱落肿瘤细胞，并对其中２２例恶性胸液患者行胸膜活组织检查。     

中草药保健剂“鸡食乐”对雏鸡红细胞免疫功能的影响研究

本研究将健康1日龄京白雏鸡100只随机均分为试验组和对照组.试验组饮水中添加“鸡食乐”煎汁,使饮水药液浓度为1%让鸡自由饮用;对照组饮水中不添加任何药物.饲养至7周龄,各组取15只采血测试红细胞免疫功能.结果,试验组、对照组红细胞C_(3b)受体花环形成率(E-C_(3b)R)分别为13.4±1.51%、10.6±1.25%,组间差异极显著(P<0.01),红细胞免疫复合物花环形成率(E—IC)分别为5.4±1.51%、4.7±1.34%,组间差异不显著(P>0.05),红细胞C_(3b)受体花环促进率(RFER)分别为55.5±10.8%、38.3±10.7%,组间差异极显著(P<0.01);红细胞C_(3b)受体花环抑制(RFIR)分别为17.4±3.4%、17.7±3.8%,组间差异不显著(P>0.05).