丹参嫩茎组织培养及无性系建立的研究

为保护濒危植物丹参,实现人工栽培,以嫩茎为材料,进行了愈伤组织诱导与分化、试管苗生根、继代、移栽和定植研究.结果证明:MS+6-BA0.3 mg.L-1+2,4-D2.0 mg.L-1+NAA0.8 mg.L-1是丹参嫩茎愈伤组织诱导培养和继代培养的理想培养基;1/2MS+AgNO30.2 mg.L-1和1/2MS+AgNO30.2 mg.L-1+6-BA 0.1 mg.L-12种培养基是丹参颗粒状愈伤组织块分化培养的理想培养基;以经过浓度为10mg.L-1的NAA溶液处理3 m in的不定芽为材料、以1/3MS+IAA0.4 mg.L-1为培养基的方法是丹参不定芽生根培养的理想方法.试管苗移栽成活率为92.7%,定植成活率为99.2%.定植的试管苗保持了野生丹参的所有生物性,建立起丹参的无性系.     

Monte Carlo方法研究光子在有界肿瘤组织中的分布

目的研究有界肿瘤组织中光子分布特性。方法通过建立光在有界肿瘤组织中传输模型,用蒙特卡罗方法模拟光子在有界生物组织的传输,与半无限大肿瘤组织中光子分布的特性对比,分析光子在有界肿瘤组织中的分布特性。结果肿瘤组织中光子能量密度分布在纵向和横向基本是按负指数规律变化,但沿纵向在入射表面附近有极值点,当取定较小边界范围时,光子能量密度增加,组织内的有效光子数下降。结论有界肿瘤组织光子能量密度沿纵向和横向变化规律与半无限大组织变化规律相似,肿瘤组织边界影响光子在生物组织的能量密度和有效光子数分布。     

植物组织培养中真菌污染防治方法研究

通过对组培接种室空气中真菌的分离和鉴定,发现曲霉(Aspergillus),毛霉(Mucor),青霉(Penicillum),木霉(Trichoderma),根霉(Rhizopus)等常见菌为组培的主要污染真菌.抑菌环实验表明次氯酸钠与制霉菌素抑菌效果较好.50mg/L酮康唑 50mg/L制霉菌素 0.1%次氯酸钠组成的混合杀菌剂,抑菌效果好,对植物伤害小,是良好的防真菌污染添加剂.     

烟草的组织培养技术研究

以烟草（Nicotiana tabacum L.）幼嫩叶片、茎段和带有叶片的茎段为外植体,对其进行组织培养研究.结果表明：烟草组织在MS＋0.1mg·L^-16-BA＋0.5mg·L^-1NAA的培养基中能诱导形成不定芽和根;在MS＋0.5mg·L^-16-BA＋0.1mg·L^-1NAA的培养基和MS＋0.5 mg·L^-16-BA＋0.5 mg·L^-1NAA的培养基中能脱分化形成愈伤组织,但只能诱导形成不定芽;带有叶片的茎段最容易诱导形成愈伤组织.     

石蒜组织培养研究

探讨了石蒜植物快速繁殖条件,结果表明:以带基盘鳞片为石蒜属植物快速繁殖的外植体诱导分化效果较理想;选用六等分法、四等分法切割鳞茎,六等分法综合效果最好;石蒜属植物适合的培养基成分为MS+BA5mg/L+NAA0.5 mg/L;继代增殖MS+BA6mg/L+NAA0.4mg/L的培养基中石蒜的增殖率最高,苗生长健壮。     

高压静电场对舟山春兰愈伤组织生长的影响

舟山春兰Cymbidium goeringii经高压静电场(HVEF)处理后,超氧化物歧化酶(SOD)活性、蛋白质及糖含量增加,过氧化物酶(POD)和吲哚乙酸(IAA)氧化酶活性下降,最终使愈伤组织生长速率提高。实验表明,高压静电场处理可促进舟山春兰愈伤组织的生长,与HVEF影响体内SOD、POD和IAA氧化酶活性以及蛋白质和糖含量的变化相关。     

低氧对小哺乳动物心肌组织中的LDH活性影响

本文进行了平原引入高原的子低性成年Wistar大鼠，成体高原土著动物－－高原鼠兔（O.curzoniae)，和成体根田鼠（M.oeconomus)在模拟不同海拔代氧和时间下心肌中乳酸脱氢酶活性的比较研究。研究表明无论在海拔5000米或8000米以及模拟低氧1天至25天时，三种动物心肌中乳酸脱氢酶活性无差异。     

生长调节剂对万寿菊花药培养的影响

以B5为基本培养基,选用KT／NAA、KT／2,4-D、6-BA／NAA、6-BA／2,4-D4种生长调节剂组合;每种组合设20／3、25／3、50／3、80／3、50／1、80／16种比例,研究对万寿菊花药愈伤组织诱导和器官分化的影响。结果表明,KT／NAA=20／3的花药愈伤组织诱导率最高;KT／NAA：25／3、KT／NAA=20／3和6-BA／NAA=25／3最有利器官分化;2,4-D与6-BA、KT组合对器官分化无作用。     

抗晚疫病马铃薯的花药培养研究

对4个品种的抗晚疫病马铃薯进行了花药培养的研究。结果表明：不同培养基对同一品种花药的总诱导数和胚状体诱导数有显著影响;在相同培养基条件下,不同品种的总诱导数差异显著,胚状体诱导数差异不显著;总诱导率最高的诱导培养基是D：MS＋2,4-D2 mg/L＋BAP2 mg/L＋活性炭2 g/L＋马铃薯块茎提取液200 g/L;适合S17、T3、KW47诱导胚状体的培养基是B：MS＋NAA2 mg/L＋BAP2 mg/L＋活性炭2 g/L＋马铃薯块茎提取液200 g/L。