结缕草的组织培养

以辽宁产结缕草种胚为材料 ,在MS +10 0mg/L肌醇 +0 4mg/LVB1+1 0mg/L 2 ,4 D +30g/L蔗糖 +0 8%琼脂培养基上暗培养 ,产生愈伤组织 ,诱导率为 85 % .愈伤组织经多次继代培养后可保持分化潜力 .光照培养后分化出丛生状叶片 ,并在培养基MS +10 0mg/L肌醇 +0 4mg/LVB1+30g/L蔗糖 +0 8%琼脂上大量生根 ,形成再生植株 ,再生率为 80 % .平均每个种胚可产生 2 0～ 30个小植株 ,再生周期为 80d左右 .     

有斑百合叶片的组织培养

试验采用红色顶生花有斑百合为试材，取其叶片进行组织培养，在MS＋2．4－D1．0ml／L＋6BA0．5mg／L＋蔗糖30g＋琼脂娄7g的培养基上进行培养，形成愈僵伤组织有鳞茎丛，在MS＋2．4－D1．0mg／L＋蔗糖30g＋琼脂粉7g的培养基上进行培养，仅形成了愈伤组织，在MS＋6BA1.0mg/L IAA0.5mg/L＋蔗糖30g＋琼脂粉7g上进行培养，不经过愈伤组织，直接在外植体上形成了鳞茎丛，经过诱导生根，长成子幼苗，幼苗长至5cm左右，栽到蛭石与沙土的混合基质中培养进一步长成了植株。     

小麦叶基切段愈伤组织的诱导和植株再生

从3～5d龄小麦籽苗幼叶基部切段诱导出大量愈伤组织。诱导可再生的愈伤组织的培养基为MS 1．5mg／L 2，4-D 0．2mg／L，激动素(KT) 500mg／L，水解酪蛋白(CH) 120mg／L，天冬酰胺 100mg／L，肌醇 3％蔗糖 0．7％琼脂粉。当愈伤组织转移到生长调节物质改变为2mg／L KT，1mg／L NAA和0．1mg／L 2，4-D的MS培养基上培养后，出现了苗的分化。当分化苗在无机盐分减半的MS培养基上培养后，产生了根。愈伤组织的形成和植株再生的频率与外植体的位置和籽苗的发育阶段密切相关，3～4d龄苗叶基1cm处的切段效果最好。叶基愈伤组织的分化能力可保持3～4个月。     

仙客来种苗球茎胚性愈伤的诱导及体胚的发生

为了建立仙客来稳定的快繁增殖体系,以仙客来种苗为试材,接种于含不同浓度激素组合的I／2MS培养基上,经过初培养和多次继代培养,诱导产生胚性愈伤,结果表明：球茎是较好的诱导胚性愈伤的材料,1／2MS＋6-BA0．2mg／L＋2,4-D2mg／L＋蔗糖30g／L＋琼脂6．5g／L＋肌醇100mg／L＋酪蛋白100mg／L是较好的诱导配方,将胚性愈伤转接到不含激素的1／2MS基本培养基上,诱导产生大量球形胚和鱼雷胚,2—3周后正常成熟的体胚萌发,表明此研究可以为仙客来的快速繁殖提供技术参考．     

不同苜蓿栽培品种再生体系的差异性比较

通过对10种不同苜蓿的栽培品种再生体系的比较研究,以及再生条件的优化,筛选出易于再生的费纳尔,金皇后,赛特6号3个苜蓿栽培品种．结果表明：胚性愈伤组织诱导培养基：改良Ms＋2,4-D2mg／L＋6-BA0．5mg／L＋蔗糖3％,胚性愈伤组织诱导率为65％～92％;胚状体诱导培养基：SH＋2,4-D2mg／L＋6-BA0．5mg／L＋LH300mg／L＋蔗糖3％;胚状体诱导率为42．3％～83．4％;胚状体再分化培养基：SH＋GA30．5mg／L＋LH300mg／L＋肌醇60mg／L蔗糖3％;胚状体萌发率为20％～75％;生根培养基：1／2Ms＋NAA0．3～0.5mg／L＋蔗糖2％,生根率为91％,移栽成活率93％．     

杉木合子胚愈伤组织的诱导及植株再生

以杉木成熟及未成熟合子胚为外植体,研究了基本培养基、植物激素、合子胚的发育阶段等因素对杉木愈伤组织的诱导及不定芽分化的影响。结果表明：1／2MS＋2mg／L 2,4-D＋1．0mg／L 6-BA＋1．0mg／L KT＋30g／L蔗糖是成熟合子胚诱导愈伤组织的最佳培养基;处于胚胎选择阶段或者组织与器官分化阶段的幼胚,能诱导出松软、晶莹透明的愈伤组织,诱导频率为2％～6％。成熟阶段的幼胚诱导出的愈伤组织的外观形态与成熟合子胚诱导出的愈伤组织相似,愈伤组织的诱导频率随着合子胚发育的成熟而迅速提高;DCR＋1．5mg／L 6-BA＋1．5mg／L KT＋20g／L蔗糖是诱导不定芽发生的最佳培养基。高约1．5cm的不定芽转入生根培养基,生根率可达100%。     

风车草的组织培养与快繁体系的建立

本实验以风车草（Graptopetalum paraguayense）的叶片为材料,研究其快繁成功．结果表明：正面叶片接种于琼脂或者MS培养基上,其无菌苗培养出苗率最高;疏松愈伤组织和胚性愈伤组织诱导的最佳培养基分别为：MS＋6-BA0．5mg／L＋2,4-D0mg／L;MS＋6-BA0．5＋2,4-D2．0;疏松愈伤芽诱导以及生根分别以：MS＋6-BAO．5m∥L＋NAAO．5m∥L;MS＋IBA0．5mg／L＋NAA0．5mg／L最适．各培养基pH5．8,附加0．7％的琼脂,3％蔗糖．炼苗和移栽的适当方案为：蛭石：珍珠岩=3：1灭菌培养基质中保湿培养;蛭石：珍珠岩=5：1未经灭菌的培养基质中炼苗培养．     

大理百合的离体快繁研究

以大理百合的鳞片为外植体进行离体培养,获得再生植株,并初步建立起快速繁殖体系．结果表明：大理百合鳞片适宜诱导芽和愈伤组织的培养基MS＋0．5mg／LBA＋0．1～0．5mg／LNAA＋3％蔗糖;增殖培养基为MS＋0．5mg／LBA＋0．05～0．1mg／LNAA＋4．5％蔗糖;生根结鳞茎培养基为1／4MS＋0．01mg／LNAA＋6％蔗糖＋10mg／LCCC．     

互叶白千层愈伤组织诱导及植株再生

本文报导了互叶白千层从无菌种子苗叶片诱导愈伤组织到植株再生的研究结果．实验表明：以继代代数不同的无菌苗叶片为诱导材料,在MS基本培养基中添加TDZ0．4mg／L＋2,4-D0．4mg／L的第五代继代苗诱导效果较好,愈伤组织诱导率达100％．在互叶白千层愈伤组织分化阶段,在MS基本培养基中,激素组合筛选中以添）m6-BA2．0mg／L＋IAA2．5mg／L的分化效果较好,分化率高达94．53％．在分化苗伸长生根阶段,以MS＋6-BA2．0mg／L＋NAA0．8mg／L＋AC0．1％的效果较为显著,苗平均高度9．4cm,苗最壮,根粗且壮．     

裂叶秋海棠的离体快速繁殖

利用野生裂叶秋海棠叶片及叶柄培养，通过两种方式获得大量再生植株。(1)直接从外植体表面诱导出不定芽，最佳诱导培养基为MS 6-BA 3mg／L，不定芽在培养基MS NAA0．5mg／L 6-BA0．5mg／L增殖成丛生芽．(2)先诱导出愈伤组织，再由愈伤组织分化出大量不定芽．最佳愈伤组织诱导培养基为MS NAA0．5mg／L 2，4-D0．5mg／L 6-BA0．5mg／L,愈伤组织不定芽分化培养基为MS 6-BA 1mg／L,试管苗在含1／5MS无机盐的培养基上生根，之后移栽成活率达85％。     

长春花组织培养与快繁技术初探

本文以长春花无菌苗的芽为外植体进行组织培养。适合芽诱导和增殖的培养基为MS＋0．50mg/L6-BA＋0．06mg／LIBA＋300g/L蔗糖＋7g/L琼脂;适合生根的培养基为1／2MS,0．10mg/LIBA＋0．20mg／LNAA＋30g／L蔗糖＋7g/L琼脂。经生根壮苗培养和炼苗25d后,移栽成活率高达92％。     

野大麦组织培养及植株再生的研究

以野大麦成熟胚为外植体，接种于MS 2，4-D2．0mg／L KT0．2mg／L NAA0．5mg／L Su3％的培养基中，诱导愈伤组织；然后在培养基MS 2，4-D2．0mg／L KT0．2mg／L NAA1．0mg／L Su3％上进行继代培养，每次继代时间为20天左右；再用MS KT2．0mg／L NAA0．2mg／L Su1．5％进行分化，分化率达80％以上．     

车窝草嫩叶无性系建立的研究

研究了车窝草嫩叶愈伤组织的诱导、分化、试管苗生根、移栽、扦插所需要的条件,建立起优良植株的无性系及快速繁殖技术．结果证明,诱导嫩叶愈伤组织的理想培养基是MS＋BA0．4mg／L＋2,4-DO．4mg／L;愈伤组织分化的理想的培养基是MS＋BA0．5mg／L;生根的理想培养基是1,2MS＋IAA0．4mg／L～0．8mg／L,以炉灰渣为试管苗的移栽扦插基质,移栽成活率为100％,扦插成活率为95％;田间栽培的试管菌长势好于实生苗。     

不同激素及添加物对杭白菊组织培养的影响

以杭白菊茎尖为试材,将其接种在培养基上（以NAA,AC,2,4-D,6-BA及水解乳蛋白为5因素进行正交,设计16组培养基）进行愈伤诱导及出芽,探讨不同添加剂对杭白菊组织培养的影响,同时分析不同因素之间影响的显著性．结果表明,不同种类浓度配比对杭白菊组织培养会产生较大影响,最佳愈伤培养基组成为MS＋3mg／L6-BA＋0．2mg／LNAA＋0．8mg／L2,4-D＋0．5％AC＋0．2％水解乳蛋白＋0．8％琼脂＋3％蔗糖;出芽培养基最佳组成为MS＋1mg／L6-BA＋0．5％AC＋0．8％琼脂＋3％蔗糖．     

鸡蛋花愈伤组织诱导和植株再生的研究

对以鸡蛋花叶片作为外植体进行愈伤组织诱导和植株再生研究,发现MS NAA0．1mg／L 6-BA 1mg／L对愈伤诱导效果最好,出愈率达96％;愈伤组织分化为芽时,MS NAA0．1mg／L 6-BA 2mg／L效果最好,分化率达98％．生根培养基为1／2MS NAA0．1mg／L．     

平车前愈伤组织的诱导和继代培养

平车前受精胚珠、叶及根分别接种于MS＋2．4—D2mg／L＋ZT0．1mg／L、MS＋2．4－D1mg／L＋ZT0．1mg／L及MS＋2．4－D1mg／L＋NAAmg／L＋ZT0．1mg／L培养基上，均能脱分化产生愈伤组织，继代培养获大量愈伤组织．     

蒲苇愈伤组织的诱导和再生体系的建立

以蒲苇成熟种子为外植体,MS为基本培养基并附加不同激素组合,筛选出诱导蒲苇愈伤组织产生和分化的最佳培养基,成功建立蒲苇的再生体系．试验结果表明：蒲苇种子最佳灭菌方式是将种子灭菌前用无菌水浸泡24h左右,然后用75％酒精消毒20s,再用0．1％（W／V）氯化汞消毒灭菌10min．愈伤组织诱导的最佳培养基为MS＋2,4-D3．0mg/L＋6-BA0．1mg／L;愈伤组织分化的最佳培养基为MS＋6-BA 2．0mg／L＋NAA 0．1mg/L分化继代的最佳培养基为MS＋6-BA 1．5mg／L＋NAA 0．2mg/L;生根最佳培养基配方为1／2MS＋NAA 0．8mg/L＋6-BA 0．2mg／L＋（0．02％）AC．     

铁线莲‘Multi Blue’体细胞胚诱导和植株再生

以铁线莲品种‘Multi Blue’的茎尖为外植体,1/2MS为基本培养基,进行胚性愈伤组织和体细胞胚的诱导及植株再生条件的选择。结果表明：茎尖外植体在1/2MS+TDZ(1.0 mg/L)+NAA(0.5 mg/L)+2 %蔗糖+0.7 %琼脂的固体培养基中培养时可形成淡黄色块状至颗粒状愈伤组织,经继代培养后可逐渐形成胚性愈伤组织;体细胞胚诱导以1/2MS+TDZ(0.2 mg/L)+IBA(0.1 mg/L)+ABA(0.3 mg/L)+CH(0.5 g/L)为佳,诱导率可达96 %;而适宜的体细胞胚萌发培养基为1/2MS+6-BA(0.2 mg/L)+IBA(0.05 mg/L)。体胚再生植株经驯化后,移 栽成活率可达80 %以上。     

密蒙花(Buddlija officinalis)基因转化受体系统的建立

以密蒙花(Buddlija officinalis Maxim)芽、叶、茎段为外植体，在B5，MS，White培养基上获得愈伤组织。结果表明：芽、幼叶脱分化能力差异不大；不同时期的叶片差异较大，以幼叶诱导为佳；作者筛选出的愈伤组织最佳培养基为B5 6-BA0．5mg／L 2，4-D0．5mg／L。在继代培养阶段，B5比MS和White更适合细胞的快速生长和繁殖；并且以叶片的愈伤组织生长较快，芽、茎段次之，最佳继代培养基为B5 6-BA0．5mg／L NAA0．5mg／L，继代的愈伤组织可在B5 6．BAlmg／L NAA0．1mg／L GA0．1mg／L培养基中分化出幼苗，在生根培养基1／2MS NAA0．2mg／L或1／2MS NAA0．6mg／L中分化出根且获得再生植株，将长4～6cm的再生小苗练苗3d后移植，幼苗成活率达100％，并于当年开花。     

铁线莲'Multi-Blue'体细胞胚诱导和植株再生

以铁线莲品种'Multi-Blue'的茎尖为外植体,1/2MS为基本培养基,进行胚性愈伤组织和体细胞胚的诱导及植株再生条件的选择.结果表明:茎尖外植体在1/2MS+TDZ(1.0mg/L)+NAA(0.5mg/L)+2%蔗糖+0.7%琼脂的固体培养基中培养时可形成淡黄色块状至颗粒状愈伤组织,经继代培养后可逐渐形成胚性愈伤组织;体细胞胚诱导以1/2MS+TDZ(0.2mg/L)+IBA(0.1mg/L)+ABA(0.3mg/L)+CH(0.5g/L)为佳,诱导率可达96%;而适宜的体细胞胚萌发培养基为1/2MS+6-BA(0.2mg/L)+IBA(0.05mg/L).体胚再生植株经驯化后,移栽成活率可达80%以上.