康乃馨的组织培养及快速繁殖研究

通过顶芽和侧芽培养实现了康乃馨的组织培养和快速繁殖．实验表明,以MS为基本培养基,附加BA1．0mg／L IAA0．05mg／L适于芽的诱导与增殖;附加BA0．5～2．0mg／L IAA0．2～1．0mg／L适于愈伤组织的诱导;附加MS BA1．0～2．0mg／L IAA0．05～0．1mg／L适于愈伤组织的分化．幼芽在1／2MS NAA0．075mg／L 0．1％活性炭的生根培养基中生根率达到100％．     

变色白前嫩茎组织培养及快速繁殖的研究

本研究以变色白前的嫩茎为材料,进行了愈伤组织的诱导和分化、不定芽的继代培养和生根继代培养以及试管苗移栽和移植的研究,建立起变色白前嫩茎的快速繁殖技术。结果证明：MS＋BA0.5mg·L^-1＋NAA0.5mg·L^-1＋2,4-D1.5mg·L^-1是嫩茎愈伤组织诱导培养的适宜培养基;MS＋NAA0.1mg·L^-1＋AgNO30.4mg·L^-1＋ZT1.0mg·L^-1是愈伤组织分化培养的适宜培养基;1/2MS＋ZT1.0mg·L^-1＋NAA0.1mg·L^-1＋GA30.4mg·L^-1是不定芽继代培养的适宜培养基;1/2MS＋NAA0.1mg·L^-1＋IAA0.4mg·L^-1是试管苗生根和生根继代培养的适宜培养基;在温室中,试管苗移栽的成活率为88.5%;移植到山坡上的试管苗保持了变色白前的生物学特征,且长势比野生植株旺盛。     

安祖花组织培养快繁技术研究

将外植体接种于诱导愈伤组织和芽的分化培养基上，培养１个周期（３０～４０ｄ），外植体上出现光滑的愈伤组织，２个周期后愈伤组织上分化出芽体，将有芽体分化的愈伤组织转入ＭＳ＋ＢＡ０．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡＯ．１ｍｇ／Ｌ培养基中，２个月左右可长成２～３ｃｍ的生根小植株。生根试管苗经炼苗后移入花盆，生长良好。     

菊花组织培养和快速繁殖

花卉组织培养的概况、优点等，菊花花瓣组织培养的方法（包括培养条件、生长与分化情况等）及意义。     

观叶花烛的组织培养与快速繁殖

观叶花烛 (ＡｎｔｈｕｒｉｕｍＷａｒｏｃｑｕｅａｎｕｍ)是天南星科花烛属的一个变种 ,为多年生草本花卉 .叶片巨大 ,长可达 1ｍ以上 .极具观赏性 .观叶花烛以分株繁殖 ,速度慢 .组织培养是快速繁殖的唯一途径 .花烛属的组织培养有人采用ＭＳ为基本培养基[1] ,也有用改良ＭＳ培养基[2 ] .我们进行了比较试验 ,成功地摸清了一个繁殖速度快 ,成苗壮 ,成本低 ,适合工厂化生产的观叶花烛快速繁殖方法 .1　材料与方法(1 )接种材料采用新抽出并完全生长的叶片 (带叶柄 ) .(2 )愈伤组织诱导以ＭＳ和改良ＭＳ(ＮＨ4ＮＯ3改为 2 0 0ｍｇ/Ｌ)培养基作…     

盾叶薯蓣组织培养与快速繁殖研究

对盾叶薯蓣的茎、叶片、叶柄进行了愈伤组织的诱导、分化，以及多芽体的诱导、生根、移栽的初步研究，结果表明：（1）茎的愈伤组织诱导率最高，在MS＋6－BA0.5mg/L 2,4-D2.0mg/L上可达87.5%，但愈伤组织不易分化出苗；（2）腋芽能萌发形成多芽体，月繁殖系数达3－5，最适宜的多芽体诱导培养基是MS＋6－BA2.0mg/L NAA0.5-1.0mg/L＋椰汁10％；（3）无根苗在MS＋6－BA2.0mg/L＋NAA2.0mg/L培养基上能形成完整的再生植株。     

香龙血树和紫铁的组织培养与快速繁殖

香龙血树（Dracaena fragrans Ker-Gawl.)带腋茎茎段接种到MS＋BA 5mg/L（单位下同）＋IAA0．2培养基中诱导形成愈伤组织并在愈伤组织上发生不定芽的分化。紫铁（Cordy-line fruticosa var.“Compacta”）顶芽接种到MS＋BA2的培养基中可被大量扩增。两种植物的诱导芽接种到MS＋IAA0．2－0．4的培养基中,可直接发生不定根,所形成的试管苗移植后,生长正常,成活率90％－100％。     

空心菜无性系的建立及快速繁殖

研究了空心菜优良变异植株嫩茎愈伤组织的诱导、分化、试管苗生根、移栽、扦插及田间栽培所需要的条件,建立起优良变异空心菜嫩茎的无性系及快速繁殖技术.结果证明,诱导嫩茎愈伤组织的理想培养基是MS BA0.8mg/L 2,4 D0.3mg/L;诱导愈伤组织分化的理想培养基是MS La(NO3)30.8mg/L;生根的理想培养基是1/2MS IAA0.2mg/L;以炉灰渣为试管苗的移栽扦插基质,移栽成活率为100%,扦插成活率为98.6%.试管苗田间栽培试验还证明,这种试管苗生长旺盛,可以收获二次,产量提高了约一倍.     

丽格海棠的组织培养与快速繁殖研究

以丽格海棠的茎状、叶柄、叶片为外植体进行组织培养。最佳培养基：（1）诱导培养基MS＋6－BA4．0mg/L(单位下同）＋IBA1．0；（2）增殖培养基MS＋6－BA0．5＋IAA0．2；（3）生根培养基MS＋NAA0．2．生根壮苗培养50d左右，经移栽，成活率达92％左右。     

康泰凤梨的组织培养与快速繁殖研究

用康泰凤梨的侧芽作外植体进行培养，成功地建立了康泰凤梨的快速繁殖程序．康泰凤梨的侧芽基部切块接种在(1)MS BAl．5mg／L诱导培养基上，形成愈伤组织；愈伤组织在(2)MS BA1．0mg／L IBA0．5mg／L的培养基上诱导丛生芽及进行继代增殖培养，效果较好；不定芽在(3)MS IBA0．5mg／L NAA0．5mg／L的培养基上易生根。健壮的试管苗移栽2个月后，成活率达95％。     

蝴蝶兰的组织培养与快速繁殖

取蝴蝶兰的茎尖组织作为外植体．经过2次灭菌后。接种到N6培养基上．在25℃，2000lx光照条件下培养2个月，即可诱导生成原球茎．将诱导生成的原球茎分割成小的组织块。经过1～2个月的继代培养后，又生成新的原球茎．如此反复切割培养。实现了原球茎的增殖．原球茎再经过生根。长出新叶。则分化形成完整的植株。     

凤仙花的组织培养与离体快繁

以凤仙的带芽茎段、茎尖、幼叶为外植体,在附加不同种类及浓度的植物激素的MS培养基上进行快速繁殖,诱导芽的最适培养基为MS 0.5 mg·L-1 BA 0.01 mg·L-1 IAA 0.01 mg·L-1 GA3,芽的增殖培养基为MS 1.0 mg·L-1 BA 0.01 mg·L-1 IAA 0.01 mg·L-1 GA3;增殖系数为6～8倍.根诱导最佳培养基为MS 0.1～0.5 mg·L-1 BA 0.005 mg·L-1 IAA.     

黄金香柳的组织培养与快速繁殖

以黄金香柳(Melaleuca bracteata cv.)为材料,研究基本培养基中不同浓度6-BA和NAA对黄金香柳试管苗增殖的影响。试验结果表明,温度为(25±1)℃、光照时间12 h·d-1、光照强度2000 LX的培养条件下,在13种培养基处理中,适宜黄金香柳试管苗快速增殖的培养基是MS+6-BA 0.1 mg·L-1+NAA 0.05 mg·L-1+琼脂6.2 g·L-1+蔗糖30 g·L-1,该培养基配比的每瓶试管苗平均增殖倍数可达16.17倍。丛生芽在1/2MS+琼脂6.2 g·L-1+蔗糖30 g·L-1的培养基上易生根,可以获得健壮完整的小苗。     

细辛组织培养快速繁殖初探

以细辛的根状茎为外植体进行组织培养及继代培养、适合愈伤组织诱导并增殖的培养基为MS+6-BA3.0 mg·L~(-1)+NAA mg·L~(-1);适合诱导再生植株并快速增殖的培养基为MS+6-BA0.8mg·L~(-1)+NAA0.1mg·L~(-1);生根培养基为MS+NAAO.2 mg·L~(-1)+0.5％活性炭。经生根壮苗培养30d左右,移栽后成活率可达98％以上。     

紫参和安祖花不定芽人工种子的研究

在含高浓度细胞分裂素和低浓度生长素的培养基上，紫参（Ｓａｌｖｉａｃｈｉｎｅｎｓｉｓ）和安祖花（Ａｎｔｈｕｒｉｕｍａｎｄｒａｅａｎｕｍ）均以叶片为外植体，诱导产生不定芽，但单个不定芽较难从致从致密愈伤组织上分离，这种不定芽包裹成人工种子，在１／２ＭＳ培养基上培养，分别获得７２．７％和１１．３％的萌发率，但均未成成小植株，用高浓度生长素和低浓度细胞分裂素处理（或低浓度生长素单独处理）上述带芽愈伤组织后     

环草石斛(D.loddigesii Rolfe.)快速繁殖研究

用环草石斛的茎段作为外植体进行组织培养,以MS培养基为基本培养基,通过形成丛生芽的形式快速繁殖试管苗,改变了过去通过原球茎诱导途径进行繁殖的方式,简化了操作步骤。结果表明：芽诱导、芽增殖与继代培养基、壮苗与生根培养基分别以MS NAA0．1mg／L 6-BA1．0mg／L、MS NAA0．1mg／L 6-BA3．0mg／L、1／2MS NAA0．7mg／L为最好;移栽最适基质以碳酸盐小石子：杉木屑=1：2,上面铺盖1cm厚的苔藓为最好,幼苗的成活率达95％;取材的位置不同对环草石斛出芽也有一定的影响,茎尖部位明显要高于其它部位,茎中部次之,而茎基部几乎不能萌发;茎段外植体苗比种子苗成株快,茎粗,苗壮,易成活;外植体苗分段增殖时基部茎段的增殖系数比上部茎段大,生长速度快。继代增殖苗段比野生植株增殖快。同时还总结了环草石斛的组织培养和快速繁殖过程,并对其工业化生产进行了初步讨论。     

宜兴百合的组织培养和快速繁殖

以组织培养获得的宜兴百合小鳞茎为试验材料,研究了不同基本培养基、NAA与6-BA的配比、矮壮素（CCC）、2,4-D、活性炭、蔗糖及悬浮培养方法对小鳞茎增殖和膨大的影响．结果表明,最佳诱导培养基为MS培养基,有利于提高分化率的最佳配方为：MS＋0．15mg／LNAA＋2．0mg／L6-BA,小鳞茎膨大增重的最佳培养基为：MS＋0．15mg／LNAA＋2．0mg／L6-BA＋0.1mg／L CCC＋6—8％蔗糖,培养方式为液体振荡培养优于固体培养．