甘蓝型油菜萝卜胞质不育恢复材料测交F4代的快繁生根及愈伤组织诱导

利用油菜萝卜胞质不育恢复材料测交F4代种子,在附加各种不同激素浓度组合的MS培养基上诱导丛生芽、生根及愈伤组织诱导,结果表明在MS培养基中添加1.0mg/L 6-BA+0.1mg/L NAA对诱导丛生芽有较好的效果,1/2MS培养基对小芽生根效果最好,在MS培养基中添加0.5mg/L 6-BA +0.1mg/L NAA+0.25mg/L GA3+0.1mg/L 2,4-D对诱导愈伤组织效果最好.     

甘蓝型油菜萝卜胞质不育恢复材料测交F4代的快繁生根及愈伤组织诱导

利用油菜萝卜胞质不育恢复材料测交F4代种子，在附加各种不同激素浓度组合的MS培养基上访导丛生芽、生根及愈伤组织诱导，结果表明：在MS培养基中添加1．0mg/L6—BA_0.1mg/L NAA对诱导丛生芽有较好的效果，l／2MS培养基对小芽生根效果最好，在MS培养基中添加0．5mg/L 8-BA 0.1mg/L NAA 0.25mg/L GA3 0.1mg/L 2,4-D对诱导愈伤组织效果最好．     

两种东方系百合组织培养快繁技术

以东方系百合索邦和西伯利亚的种球鳞片为外植体,以MS为基本培养基,添加NAA、6-BA、TDZ、KT、IBA、2,4-D等不同植物生长调节剂,筛选鳞片愈伤组织诱导、增殖、分化及再生苗生根的最佳培养基,为百合种质保存、组培快繁及脱毒奠定基础.结果表明,索邦百合在MS+IBA 0.1 mg/L+6-BA 1.0 mg/L培养基中愈伤组织诱导效果最好,在MS+NAA 0.1 mg/L+6-BA 1.0 mg/L培养基中愈伤组织增殖最好,在MS+NAA 0.3 mg/L+TDZ 0.1 mg/L+KT 0.2 mg/L培养基中分化最好;西伯利亚百合在MS+NAA 0.1 mg/L+6-BA 1.0 mg/L培养基中愈伤组织的诱导和增殖最好,在MS+IBA 1.0 mg/L+KT 0.5 mg/L培养基中分化效果最好.二者均在1/2 MS+NAA 0.1 mg/L+IBA 0.01 mg/L培养基中生根最好.     

铁线莲‘朱卡’组织培养技术及再生体系的建立

【目的】以铁线莲‘朱卡’(Clematis ‘Julka’)的带芽茎段为起始材料,通过组织培养方法建立再生体系。【方法】利用腋芽诱导—不定芽增殖—生根和愈伤组织诱导—增殖—分化—生根两种途径,建立该品种的组织培养再生体系,形成铁线莲‘朱卡’完整植株。【结果】铁线莲‘朱卡’组织培养最适宜灭菌条件为质量分数10%次氯酸钠溶液灭菌12min;带芽茎段诱导腋芽最适培养基为MS+NAA 0.1 mg/L+6-BA 1.0 mg/L,不定芽增殖最适培养基为MS+IBA 0.20 mg/L+6-BA 1.0 mg/L+GA₃ 0.2 mg/L;带芽茎段诱导愈伤组织最适培养基为MS+NAA 0.05 mg/L+6-BA 2.0 mg/L,愈伤组织增殖最适培养基为MS+NAA 0.20 mg/L +6-BA 2.0 mg/L,愈伤组织分化最适培养基为MS+NAA 0.03 mg/L+6-BA 3.0 mg/L;最佳生根培养基为1/2 MS+IBA 0.3 mg/L。【结论】首次用两种器官发生方法建立了稳定高效的铁线莲‘朱卡’再生体系。直接形成不定芽时增殖倍数可达5.52。诱导愈伤组织途径的器官发生中,愈伤组织分化率可达76.7%,分化不定芽平均数超过3。两种途径诱导生根率都在90%以上。     

白花碎米荠组织培养及快速繁殖的研究

以白花碎米荠的嫩茎为材料,采用组织培养的方法,进行了愈伤组织诱导与分化,不定芽生根,试管苗的生根继代增殖培养与试管苗的移栽和定植的研究.结果证明:MS+6-BA 1.2 mg/L+2,4-D 1.0 mg/L是嫩茎愈伤组织诱导培养的理想培养基;1/2MS+AgNO 31.0 mg/L与1/2MS+AgNO31.0 mg/L+IAA 0.1 mg/L是愈伤组织分化培养的理想培养基;把不定芽的下部切口浸到浓度为5 mg/L的NAA溶液中处理约5 min,再将其接种到1/3MS+IAA 0.5 mg/L～0.7 mg/L两种培养基上进行生根培养的方法是不定芽生根培养的理想方法;1/3MS+IAA 0.6 mg/L是试管苗生根继代增殖培养的理想培养基.试管苗移栽成活率为90.1%,定植成活率为96%.定植的试管苗保持了野生白花碎米荠的所有生物学性状.     

毛酸浆下胚轴组织培养研究

以毛酸浆下胚轴为外植体,研究不同激素配比对其愈伤组织诱导、分化及不定芽生根的影响.结果表明,愈伤组织诱导最佳培养基为MS+6-BA 3mg/L+NAA 0.2mg/L,愈伤组织分化最佳培养基为MS+6-BA 2mg/+IAA 0.2mg/L,不定芽生根最佳培养基为MS+NAA 0.1mg/L或MS+IBA 0.1mg/L.研究结果为毛酸浆的规模化生产、种质资源的保存和遗传转化提供了理论依据.     

黄秋葵愈伤组织培养及再生体系建立的研究

以具有杂种黄蜀葵嫩茎为材料,采用组织培养的方法,进行了嫩茎的愈伤组织诱导、分化,不定芽的生根以及试管苗的生根继代增殖培养、移栽与定植的研究.结果表明:嫩茎愈伤组织诱导培养和继代增殖培养的理想培养基是MS+6-BA0.75mg/L+2,4-D2.1 mg/L;愈伤组织分化培养的理想培养基是MS+AgNO31.0 mg/L+NAA0.1mg/L+ZT1.6mg/L;1/3MS+蔗糖10g/L+IAA0.4mg/L是不定芽生根培养的理想培养基;试管苗生根继代增殖培养的理想培养基是1/3MS+ABT0.6mg/L+蔗糖10g/L+IAA0.4mg/L.试管苗移栽成活率为93.9%,定植成活率为97.5%.定植的试管苗保持了杂种黄秋葵所有植物学性状和杂种优势.     

美洲商陆高频再生体系的建立

美洲商陆为商陆科多年生草本植物,在工业、农业和医药上具有很高的应用价值.本实验拟从外植体选择、激素组合、GA3和AgNO3等物质应用角度进行试验,分析各条件对愈伤组织诱导,不定芽分化、伸长以及不定根诱导等方面的影响,旨在构建美洲商陆稳定高效的再生体系.实验结果表明:愈伤组织诱导和不定芽分化的最适外植体为茎节;将无菌苗的上部经诱导培养基转接、壮苗后,再取茎节进行愈伤组织诱导和不定芽分化,可以显著提早不定芽分化、提高芽增殖系数;不定芽诱导分化最佳培养基为MS+6-BA(3.0 mg/L)+NAA(0.01 mg/L)+TDZ(0.02 mg/L),增殖系数达12.7;不定芽伸长的最佳培养基为MS+TDZ(0.02 mg/L)+6-BA(3.0 mg/L)+NAA(0.01 mg/L)+GA3(2.0 mg/L);生根最佳培养基为1/2MS+NAA(0.4 mg/L),生根率可达91.7%以上.AgNO3处理抑制了美洲商陆不定芽的分化.     

植物生长调节剂对五鹤续断组织培养的影响

通过不同植物生长调节剂的组合和配比,对五鹤续断茎尖、幼嫩茎段和叶进行愈伤组织的诱导、丛生芽分化和增值及生根培养,确定了五鹤续断组织培养的最佳培养基为:(1)初代培养基为MS+6-BA1.5 mg/L+NAA0.1mg/L;(2)丛生芽培养基为MS+6-BA 2.0mg/L+NAA 0.6 mg/L;(3)生根培养基为1/2MS+IBA 0.4 mg/L+PP3330.4mg/L.     

裂叶秋海棠的离体快速繁殖

利用野生裂叶秋海棠叶片及叶柄培养，通过两种方式获得大量再生植株。(1)直接从外植体表面诱导出不定芽，最佳诱导培养基为MS 6-BA 3mg／L，不定芽在培养基MS NAA0．5mg／L 6-BA0．5mg／L增殖成丛生芽．(2)先诱导出愈伤组织，再由愈伤组织分化出大量不定芽．最佳愈伤组织诱导培养基为MS NAA0．5mg／L 2，4-D0．5mg／L 6-BA0．5mg／L,愈伤组织不定芽分化培养基为MS 6-BA 1mg／L,试管苗在含1／5MS无机盐的培养基上生根，之后移栽成活率达85％。     

白三叶高频组织培养再生体系的研究

以白三叶的子叶节为外植体,对影响白三叶愈伤组织的诱导、丛生芽的分化及生根的激素种类和浓度进行了优化.结果表明:诱导愈伤组织的最佳培养基为:MS+2,4-D 2 mg/L+6-BA 0.4 mg/L+3%蔗糖+0.7%琼脂,诱导率为62.67%;诱导从生芽分化的最佳培养基为:MS+6-BA 0.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L+3%蔗糖+0.7%琼脂,分化率为92.33%;诱导生根的最佳生根培养基为:MS+NAA 0.2 mg/L+1.5%蔗糖+0.8%琼脂,生根率达100%;建立了一个高频的白三叶再生体系,为白三叶基因工程奠定基础.     

番茄高效再生体系的建立

以砧木1号番茄的子叶和下胚轴为外植体进行离体组织培养,研究了IAA和6-BA及NAA和6-BA不同激素配比对外植体诱导不定芽及生根的影响。结果表明:培养基MS+0.2mg/L IAA+1.0mg/L 6-BA为诱导子叶外植体愈伤组织和不定芽的最适培养基,而MS+0.5mg/L IAA+1.0mg/L 6-BA为诱导下胚轴外植体愈伤组织和不定芽的最适培养基;诱导不定芽生根的最佳培养基为MS+0.1mg/L IAA。     

滴水珠组培快繁的实验研究

目的:通过滴水珠组织培养及快速繁殖,解决滴水珠的资源匮乏问题。方法:以滴水珠的珠芽和叶片及叶柄为外植体,进行愈伤组织诱导、愈伤组织分化、丛生芽的增殖、生根诱导及组培苗的移栽研究。采用酸性染料比色法测定滴水珠愈伤组织中总生物碱的含量。结果:滴水珠组织培养的最佳外植体为叶片,在MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L的培养基上可以较好地诱导出滴水珠的愈伤组织,滴水珠愈伤分化及丛生芽增殖的最适培养基为MS+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.25 mg/L,生根诱导最适培养基为1/2MS+NAA 0.25 mg/L。在培养基中添加100g/L的香蕉汁具有促进滴水珠丛芽增殖及生根的作用。滴水珠愈伤组织中的总生物碱含量为0.784 8%。结论:初步建立了完整的滴水珠的组织培养体系,并成功移栽。     

桂竹香花托诱导再生植株的研究

用桂竹香带子房花托,在附加6-BA2.00～3.00mg/L+NAA0.1～0.5mg/L的MS培养基上诱导出愈伤组织后,转接到附加6-BA0.2mg/L+NAA0.01mg/L的MS培养基上,分化出的丛生芽状态最佳,丛生芽在附加NAA0.5mg/L的1/2MS培养基中可诱导出多而粗壮的根.     

野百合的组织培养研究

对采自大量子河森林公园的野百合进行鳞片诱导和快速繁殖组织培养研究.结果表明:鳞片下部可直接诱导生芽、生根,是初代培养的最佳外植体;6-BA浓度为0.5mg/L,NAA浓度分别为0.05mg/L,L和0.1mg/L有较高的芽诱导率;在NAA:6-BA=1:20的培养基中愈伤组织诱导结果较好;诱导鳞片生根的6-BA浓度不宜过高,0.5mg/L较适宜生根;鳞片凹面接触培养基仅有愈伤组织形成,凸面接触培养基可产生鳞芽;用低浓度(0.1mg/L～0.5mg/L)IAA诱导生根效果比NAA好;以1/2锯末+1/2洁净河沙为栽培基质的移栽苗长势最好.     

非洲茉莉再生体系的建立

以非洲茉莉(Stephanotis floribunda R.Br.)茎尖和带芽茎段为外植体,研究激素对非洲茉莉芽增殖和生根的影响.实验结果表明,非洲茉莉愈伤组织诱导的最佳培养基为MS+6-BA 0.5 mg/L(单位下同)+IAA 0.5,诱导率可达100%.适合愈伤组织分化的最佳培养基为MS+6-BA 1.0+IAA 0.1,分化率可达80%.适合芽增殖的最佳培养基为MS+6-BA 0.5+IBA 0.1,增殖系数为5.9.生根培养基为1/2MS+IBA 0.5+NAA 0.2,生根率可达40%,且根生长健壮.     

太行菊顶芽离体高效再生系的建立

采用太行菊茎尖组培快繁技术,建立了太行菊无菌顶芽离体试管苗再生体系.通过MS培养基和激素配比实验,筛选出太行菊组织培养与快速繁殖的最佳培养基配方.结果表明:最适宜的外植体是幼嫩太行菊植株的茎顶芽;诱导愈伤组织的最适培养基为:MS NAA 0.2 mg/L 6-BA 2.0 mg/L;诱导丛生芽的最适培养基为:MS NAA 0.2mg/L 6-BA 2.0 mg/L IBA 0.1 mg/L,MS NAA 0.2 mg/L 6-BA 1.0 mg/L;诱导试管苗生根的最适培养基为:1/2 MS NAA 0.2mg/L;Ca2 可明显提高芽的再生率;电子显微镜进行病毒检测后,筛选出3个脱病毒株系可提供优质种苗的种源.     

茖葱愈伤组织诱导与再分化培养基筛选

以茖葱鳞片为外植体,研究不同培养基对愈伤组织诱导和植株再生的影响.结果表明：茖葱鳞片在MS培养基中诱导的愈伤组织好于White和WPM培养基,说明MS提供的营养物质更有利于茖葱愈伤组织生长.在MS培养基中加入6-BA与2,4-D或NAA不同用量组合都可以诱导茖葱鳞片形成愈伤组织.其中,MS+6-BA 1.5 mg/L+2,4-D 0.3 mg/L和MS+6-BA 1.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L诱导的茖葱鳞片愈伤组织效果较好;6-BA与2,4-D或NAA组合诱导的茖葱愈伤组织都能够分化出不定芽,而6-BA与NAA组合诱导的不定芽数量较多;在MS+6-BA 1.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L培养基中不定芽诱导率最高,达到97.66%,不定芽增殖数量(5.16个)较多;茖葱芽苗在1/2MS+NAA 0.5 mg/L+6-BA 0.1 mg/L中不定根发生率最高(平均99.12%)、单株根数最多(平均5.12条);以松针土为基质时,茖葱组培苗成活率最高(平均96.58%).     

圆叶椒草叶片组织培养研究

以圆叶椒草的叶片为外植体,研究不同激素浓度组合对圆叶椒草愈伤组织的诱导、不定芽分化、丛生芽生长及生根的影响.实验结果表明,愈伤组织诱导和芽分化的最适培养基为MS+6-BA 2.0mg·L-1+NAA 0.2mg·L-1,丛生芽生长的最适培养基为MS+6-BA 2.5mg·L-1+NAA 0.25mg·L-1;生根的最适培养基为MS+NAA 0.1mg·L-1,试管苗移栽后成活率为100%.     

多因子正交试验对长春花离体培养条件的筛选

应用正交设计法考察了植物生长物质、蔗糖对长春花愈伤组织诱导、丛生芽诱导和生根培养的影响。最佳愈伤组织诱导培养基为MS＋2，4－D0.8mg/L NAA 1mg/L ZT 0.2mg/L。丛生芽诱导最佳培养基为MS＋6－BA0.2mg L NAA 0.3mg/L＋蔗糖30g/L，最佳生根培养基为1／2MS＋NAA 0.2mg/L IBA 0.2mg/L 蔗糖30mg/L。