大叶龙胆的染色体核型分析

本文报道了大叶龙胆(Gentiana macrophylla Pall)的核型公式为K(2n)=2X=26=2M+2m+2sm,核型为“2A”型,核型不对称系数为57.73％,染色体相对长度组成为2n=26=2L+12M_2+10M_1+2S,染色体总长度为28.34μm     

东北龙胆断根取药再植栽培生产技术研究

采用常规石蜡切片法研究了东北龙胆不定根下断面新生不定根(再生根)的发生过程;在室外露地条件下进行了断根取药后植株再定植的最佳时间探索;用高效液相色谱法对一年生再生根的龙胆苦苷含量进行了测定.结果是,东北龙胆根下断面有很强的再生能力,再生根的发生中心为形成层,属于直接器官再生,实验条件下再生根发生过程约为20天;露地实验表明,再生根在生育期各阶段均可发生,生产上宜在花期进行;再生根龙胆苦苷含量高于其他部位,可以保证药材质量.采用此方法进行龙胆药材的生产可以缩短生产周期1~2年,值得试行、推广.     

东北龙胆茎扦插及根茎移栽形成不定根部位解剖学的研究

东北龙胆是我国传统中药中最常用的生药。它对人民的身体健康是很重要的。龙胆草药的来源过去主要依靠采挖野生资源,多年来,由于挖根断苗以及开荒种田,野生资源遭到严重损坏,龙胆产量及质量逐年下降,已远远不能满足人民的需要。在国家卫生部提出抢救龙胆的号召下,对龙胆的繁殖方法进行了广泛的研究。扦插繁殖是植物繁殖惯用的主要方法之一。配合扦插方法的研究,对龙胆茎的解剖结构及根茎上不定根发生部位进行了初步研究,依此,为扦插繁殖龙胆提供一些理论资料。通过徒手切片在光镜下观察,可知其茎的横切面由外而内其结构为:表皮、皮层、维管束和髓。其维管束为双韧维管束。髓中分而有许多束中维管束。根茎上不定根发生在形成层区。     

东北龙胆再生根的发育形态学研究

东北龙胆是一种常用中药,由于采挖过度,其产量急剧下降,甚至原产地亦感自给不足,急待引种栽培。本文就无性繁殖的两个方面——剪根移栽与扦插,进行了发育形态学研究,弄清了新根再生的条件、过程和特点,为通过无性繁殖挽救这一资源植物提供了理论依据。     

东北龙胆花芽分化研究

根据东北龙胆(Gentiana manshurica Kitag.)茎顶花芽分化中的形态变化,划分为未分化期、分化初期、萼片原基分化期、花瓣原基分化期、雄蕊原基分化期、雌蕊原基分化期等6个时期.花芽分化从5月末开始到6月末基本完成,历时约30d.花芽分化的开始以植株的节数(10~11节)作为标志即可,与植株的高矮关系不大.     

东北龙胆从心形胚至种子萌发时胚的发育特点观察

观察发现东北龙胆(Gentiana manshurica Kitag)心形胚后发育细胞多为横分裂;根端、芽端都发育迟缓,胚根突破种皮主要依靠下胚轴细胞伸长,突破种皮后胚根细胞仍然为胚性细胞,细胞暂不分裂．在胚根和下胚轴之间形成下胚轴毛．不同种子的子叶和胚轴相对发育速度不同．心形胚后发育特点介于部分水生植物和典型陆生植物之间而更类似水生植物．     

东北龙胆与莕菜种子至种苗发育过程的研究

本文对东北龙胆和Xin菜从种子胚到种苗形成的发育过程进行了比较研究，发现了陆生东北龙胆在这一发育过程的早期，具有某些原始水生大型植物的形态性状，而水生的Xin菜却具有陆生植物的典型性状。     

防风根段不定芽发育的形态学研究

采用常规石蜡切片方法研究了防风根段不定芽的发生过程,发现不定芽的发生有两种途径：直接器官发生和间接器官发生．根段的粗细对不定芽的分化影响不大;根段极性不明显,在茎端和根断均有不定芽的产生．     

唐菖蒲组织培养初探

以唐菖蒲的幼嫩叶片为外植体进行组织培养,以MS为基本培养基,分别添加不同的激素组合,以获得最佳的诱导愈伤、诱芽及生根培养基．     

松属林木组织培养不定芽的发生过程──红松胚培养不定芽发生

红松（PinusKoraiensissieb．etZuce）咸熟胚离体培养，先在分化培养基培养两周，在胚轴上陆续形成不定芽。石蜡制片，观察红松成熟胚不定芽的发生过程．结果表明：不定芽起源于胚轴的皮层细胞，有的是表皮和皮层细胞同时启动。不定芽形成分四个阶段：启动阶段、芽原基形成阶段、鳞叶原基形成阶段和不定芽结构形成阶段．     

荷兰彩椒的组织培养及快繁技术

本文以子叶、下胚轴为实验材料，对荷兰彩椒的组织培养方法进行深入细致的实验研究，取得了无菌快速培养及繁殖的成功，出愈率达到100％，分化率40％，成活率达到89．4％，增殖系数在4倍以上。     

晶体百合组织培养及快速繁殖的研究

以晶体百合的盘茎及花葶为外植体成功获得再生植株，并建立快速无性繁殖系。鳞片的最佳芽诱导培养基是MS 0.1～0.3mg/LBA0～0.5mg/LIBA；芽增殖最佳培养基是MS 0.8mg/LBA 0.05～0.4mg/LNAA；小盘茎增殖最佳培养基为MS 0～0.2mg/LBA 0.05～0.4mg/LNAA；根诱导最佳培养基为1/2MS 0.05～0.10mg/LNAA。