金鱼草下胚轴不定芽发生及细胞学观察

采用金鱼草下胚轴为外植体，培养于附加不同激素浓度组合ＭＳ固体培养基上．其外植体对激素的反应表现出很大的差异．在附加２，４－Ｄ培养基上，下胚轴可诱导形成淡基色愈伤组织，但不易分化；培养于附加ＢＡ培养基上，外植体可诱导产生丛生不定芽．将不定芽转移至附加ＮＡＡ培养基上，可诱导根的形成．细胞学观察证实下胚轴不定芽的发生起源于表皮细胞     

莲叶海棠组织培养及快速无性繁殖

以莲叶海棠幼叶为材料,材料经表面消毒接种于诱导培养基上,２７ｄ左右外植体表面出现不定芽,经继代培养可获大量不定芽,不定芽在壮苗培养基上培养４５ｄ转至生根培养基中４０ｄ后长出完整根系,再生植株炼苗后转移至砂基中进行培养,移栽成活率为９０％。     

花叶竹芋的组织培养

花叶竹芋芽外植体接种到MS附加BA（4mg·L-1），KT（4mg·L-1）或BA（5mg·L-1），KT（5mg·L-1）或BA（10mg·L-1）培养基中，外植体芽继续生长，腋芽萌发．萌发芽继续诱导新芽或转移到生根培养基诱导根，诱导芽转移到MS附加NAA（2mg·L-1）培养基中形成不定根，从而形成完整植株，移植到花盆后形成再生植株．繁殖系数为：8植株／芽·代，由一个芽诱导产生新的植株约需30d。     

黑松丛生芽的诱导及植株再生

以黑松带子叶顶芽为外植体建立了包括丛生芽诱导、伸长和生根的植株再生体系。结果表明:培养基中激素的种类、浓度以及外植体年龄对丛生芽的诱导有较大影响。单独使用6-BA能诱导产生丛生芽,但数量少,生长慢,NAA与6-BA配合使用能取得更好的效果。在试验的所有组合中,4.0 mg/L 6-BA 0.05 mg/L NAA效果最佳。截取黑松外植体的最佳苗龄为22~28 d。已分化的丛生芽在无6-BA但附加0.1 mg/L NAA的改良GD培养基中伸长较明显,GA3不能促进黑松丛生芽的生长且有毒害作用。将伸长的丛生芽接种在附加0.2 mg/L NAA的1/2 WPM培养基上培养14 d再转移至无激素的1/2 WPM中,1个月后,生根率达23.3%。     

辣椒子叶和下胚轴离体培养再生

8个辣椒品种的子叶和下胚轴接种在附加不同激素的MS培养基上，经过芽诱导、芽伸长、生根、移栽入盆四个阶段，得到完整的再生植株。实验结果显示：6—8d的苗龄最佳，子叶的分化率高于下胚轴，培养基中添加AgNO3明显促进外植体的分化，GA3是芽伸长的关键因子，IBA的生根效果要好于无激素MS培养基．通过这一过程，建立起一个基于最佳激素组合的高效植株再生体系．     

辣椒（Capsicum annuum L.）下胚轴离体培养的研究

将辣椒无菌苗下胚轴切段接种在ＭＳ培养基（附加不同的植物激素）上，诱导产生愈伤组织。最适的诱导培养基为ＭＳ＋２ｍｇ／Ｌ ＢＡ，０．５ｍｇ／Ｌ ＩＡＡ，在此培养基上产生的愈伤组织具有较强的分化能力。将愈伤组织转移到分化培养基，光照培养，芽分化率可达２５．０％。不定芽在含１ｍｇ／Ｌ ＧＡ３和２ｍｇ／Ｌ ＢＡ的ＭＳ培养基上伸长成苗，再移入生根培养基上诱导生根，长成完整植株。     

大叶饲料槐高频再生体系建立及试管苗工厂化生产

通过叶片外植体愈伤组织诱导和直接不定芽再生途径,建立了大叶饲料槐的高频再生系统,采用正交试验筛选出愈伤组织最适诱导培养基为;MS附加0．5mg／L 6-BA和1．0mg／L NAA;愈伤组织分化最适培养基为：MS附加2．0mg／L 6-BA和0．2mg／L NAA。叶片外植体直接分化最适培养基为：MS附加2．0mg／L 6-BA和0．1mg／L NAA;试管苗在1／2MS附加0．2mg／L IBA、0．1mg／L NAA和2g／L AC的培养基上生根率高达100％,移栽成活率达90％,从而实现了大叶饲料槐的工厂化生产．     

植物激素对番茄花托的脱分化与分化的影响

番茄花托接种于一定浓度的2.4-D 或 NAA 的 MS 诱导培养基上.经十天左右长出愈伤组织,把生长良好的愈伤组织转移到每升含有2mg 6-BA 和1mgIAA 或每升含有1mg 6-BA和0.5mg IAAMS 分化培养基上,经1-2周后,首先在愈伤组织的表面分化出绿色的芽点,继续培养芽点生长成小叶片,此后, 在愈伤组织的基部又分化出短粗的主根和一些细长的侧根,这样,约3—5周后就可获得一批具有根、茎、叶的番茄再生小植株.     

安祖花组织培养快繁技术研究

将外植体接种于诱导愈伤组织和芽的分化培养基上，培养１个周期（３０～４０ｄ），外植体上出现光滑的愈伤组织，２个周期后愈伤组织上分化出芽体，将有芽体分化的愈伤组织转入ＭＳ＋ＢＡ０．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡＯ．１ｍｇ／Ｌ培养基中，２个月左右可长成２～３ｃｍ的生根小植株。生根试管苗经炼苗后移入花盆，生长良好。     

盾叶薯蓣组织培养快速繁殖技术的优化研究

探索了盾叶薯蓣离体培养快速繁殖的有效途径.结果表明：在附加6-BA的MS培养基上,外植体可诱导出大量的致密愈伤组织,而且致密愈伤组织在分化培养基中能分化产生大量园球茎和幼苗;而在附加2,4-D的MS培养基中,外植体被诱导出疏松愈伤组织,在随后的分化培养基上只能产生数量有限的幼苗.带枝条的园球茎在MS＋NAA0.5 mg/L＋IAA0.5 mg/L生根培养基上的生根率达到88.2%;移栽成活率达85%.     

栝楼的组织培养研究

本文对栝楼的快速繁殖,愈伤组织的诱导与再分化,不定根尖分化出不定芽进行了初步研究。结果表明:栝楼的腋芽在MS 6-BA 0.5mg/L培养基上可以快速繁殖。无根苗转移至MS NAA 0.2mg/L培养基上可以100%生根;栝楼茎段很容易诱导出愈伤组织,在MS NAA 1.0mg/L 6-BA 0.5mg/L培养基形成的愈伤组织通过继代培养35d后,形成茁壮的绿苗; 将栝楼长约1cm的不定根尖培养在MS 6-BA5-7mg/L的培养基上,均可以诱导出大量的不定芽。     

栝楼的根段及根尖培养与器官发生

离体培养栝楼的根段和根尖均能诱导产生不定芽.其发生部位在根尖端的0～3mm以内;最佳条件为:从茎尖或茎节段在含有NAAlmg/L的MS固体培养基上8d产生的不定根上截取长约0.5cm的根尖,接种在MS BA4mg/L的培养基上光下培养,可长出不定芽.     

新疆雪莲的组织培养及植株再生

本文通过研究培养基的种类、植物生长调节物质对新疆雪莲愈伤组织诱导、再生苗形成的影响,结果表明:在新疆雪莲愈伤组织诱导过程中,NAA和6-BA组合使用比NAA、6-BA、2,4-D单独使用更有利于愈伤组织的形成,MS培养基对新疆雪莲愈伤组织诱导和生长均最为有利;6,7-V培养基有利于诱导不定芽的形成;生长在1/2MS NAA0.5培养基上90%以上的不定芽可在28天内形成不定根.     

旱柳体外培养与直接分化再生系统的建立

给出了旱柳体外培养的方法:9月份至12月份采集1~2 a生枝条上带腋芽的茎段,经过筛选确定MS+0.5 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA为最佳诱导培养基,平均每个芽点产生的不定芽数量为3.5个,20 d后苗高为1.8 cm;不定芽在MS+0.1 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA培养基中继代增殖及生长较好,为适宜的增殖培养基;在形成的不定芽中有些不定芽起源于单株苗的切口基部,因此,初步建立了旱柳的直接分化再生系统,可为旱柳的遗传转化等研究奠定基础.经过壮苗处理的幼苗在MS+0.2 mg/L NAA培养基上的生根率达100%,且生根量多,幼苗生长健壮.生根苗移栽至V(草炭土)V(河沙)为3 1的混合基质中,60 d后成活率为90%左右.     

耐盐碱刺槐离体再生快繁体系的建立与优化

为提高耐盐碱刺槐的快繁效率,满足沿海及滨海盐碱地区绿化要求,以耐盐碱刺槐无性系"W009"和"W038"为试材,研究不同条件对耐盐碱刺槐试管苗分化和生根的影响.结果表明:两刺槐茎尖初代接种不定芽萌发率均好于茎段,"W009"离体茎尖不定芽萌发的最适培养基为MS+6-BA 0.5 mg·L~(-1)+NAA 0.05mg·L~(-1),茎段不定芽萌发的最适培养基为MS+6-BA 1.0mg·L~(-1)+NAA 0.1mg·L~(-1);而适合"W038"离体茎尖和茎段不定芽萌发的最适培养基则为MS+6-BA 1.0mg·L~(-1)+NAA 0.1 mg·L~(-1);适合"W009"不定芽增殖的培养基为MS+6-BA 1.0mg·L~(-1)+NAA 0.05mg·L~(-1),"W038"不定芽增殖的培养基为MS+6-BA 2.0mg·L~(-1)+NAA 0.1 mg·L~(-1);"W009"最适生根培养基为:1/2 MS+0.1 mg·L~(-1) IBA+0.2mg·L~(-1) NAA+1.0g·L~(-1)活性炭;"W038"最适生根培养基为:1/2 MS+0.3 mg·L~(-1) IBA+0.2 mg·L~(-1) NAA+1.0g·L~(-1)活性炭.     

白花碎米荠组织培养及快速繁殖的研究

以白花碎米荠的嫩茎为材料,采用组织培养的方法,进行了愈伤组织诱导与分化,不定芽生根,试管苗的生根继代增殖培养与试管苗的移栽和定植的研究.结果证明:MS+6-BA 1.2 mg/L+2,4-D 1.0 mg/L是嫩茎愈伤组织诱导培养的理想培养基;1/2MS+AgNO 31.0 mg/L与1/2MS+AgNO31.0 mg/L+IAA 0.1 mg/L是愈伤组织分化培养的理想培养基;把不定芽的下部切口浸到浓度为5 mg/L的NAA溶液中处理约5 min,再将其接种到1/3MS+IAA 0.5 mg/L～0.7 mg/L两种培养基上进行生根培养的方法是不定芽生根培养的理想方法;1/3MS+IAA 0.6 mg/L是试管苗生根继代增殖培养的理想培养基.试管苗移栽成活率为90.1%,定植成活率为96%.定植的试管苗保持了野生白花碎米荠的所有生物学性状.     

麻疯树根高效再生体系的建立及不定芽起源研究

为了克服现有麻疯树快繁技术的不足,分别以麻疯树胚根和子叶外植体诱导的不定根为外植体诱导不定芽.麻疯树子叶不定根诱导的最佳培养方式为:MS+5 mg/L IBA上培养4天,然后转至MS0培养基上生根.诱导生根率和生根数分别达到93.33%和6.54个/外植体.子叶不定根诱导不定芽的最佳培养基是MS+3.0 mg/L 6-BA+3 mg/L IAA,诱导率达到83.33%.麻疯树胚根的最佳不定芽诱导培养基为MS+0.2 mg/L 6-BA+1.0 mg/L IBA,分化率达67.80%,平均出芽数为3.25个/外植体.对麻疯树胚根再生的各阶段进行了石蜡切片观察,明确了不定芽起源于根的薄壁细胞层.与现有技术相比,本方法具有周期短、再生效率高的特点.     

苦丁茶的组织培养和快速繁殖研究

用苦丁茶当年生枝条的顶芽和侧芽作外植体，培养在附加了各种浓度ＢＡ的ＭＳ培养基上，当ＢＡ浓度为３．０ｍｇ／Ｌ时诱导芽形成及增殖效果最佳，ＧＡ２．０＋ＮＡＡ０．２ｍｇ／Ｌ和ＢＡ配合使用有利于壮苗；在１／２ＭＳ培养基中，附加ＮＡＡ０．５ｍｇ／Ｌ，生根效果最佳。试管苗高２ｃｍ～３ｃｍ、根数２～３条时开盖炼苗２ｄ～３ｄ移入培养土中，试管苗移栽成活率高。     

鸡蛋枣的组织培养与快速繁殖技术

以鸡蛋枣的茎段为外植体,进行了芽的诱导和成苗的研究.结果表明:在MS+ZT1.75mg·L-1+KT2.0mg·L-1培养基,茎段可以分化不定芽.低浓度的NAA促进不定芽的形成,在MS+ZT1.75mg·L-1+KT2.0mg·L-1+NAA0.05mg·L-1中培养基芽的增殖系数达到4.2倍.在1 2MS+IBA0.8mg·L-1培养基中,试管苗的生根率达到95.0%.试验还就外植体的消毒和组培苗的移植进行了探索.     

Regenerating plants from cryopreserved adventitious buds of haploids in rice

A large number of adventitious buds were induced fromin vitro cultured young inflorescences of haploids of rice. Having been subcultured on solidified subculture media at 26°C for 7 days, the adventitious buds were loaded into 1.8 mL plastic cryotubes with cryoprotectant and kept on ice for 45–60 min. After cooled at a rate of 1.0°C/min down to −40°C, the samples, were kept in liquid nitrogen. The adventitious buds which have been cryopreserved for about 30 days were thawed rapidly in 38–40°C water and then plated on solidified MS medium containing 3% sucrose, 0.5 mg/L NAA and 2.0 mg/L kinetin. After plated, 23%–32% of adventitious buds resumed growth and 15%–22% regenerated plantlets. The results of this work indicated that the adventitious buds derived fromin vitro cultured young inflorescences is a critical factor for the success and subculturing adventitious buds on MS medium containing 3% sucrose and 4% sorbitol or 20% potato extract is essential to the procedure. The effective cryoprotectant is 10% DMSO (dimethyl sulfoximide)+0.5 mol/L sorbitol. Supported by the Natural Science Foundation of Hubei Province Zhang Zhihong: born in 1963, Lecturer