改进茶叶中提取咖啡因的有效方法

针对提取咖啡因常用的5种方法:"茶叶中加入生石灰在索氏提取器中用95%乙醇提取-升华法"、"茶叶中加入生石灰95%乙醇回流浸取-升华法"、"将茶叶在热水溶解浸取-氯仿萃取法"、"碳酸钠水溶液热浸取二氯甲烷萃取法"、"直接升华法",作者对提取咖啡因方法进行了实际比较,发现在茶叶末中混合一定量的碱碳酸钠,会改善咖啡因的收率,增强提取效果.     

提取咖啡因实验绿色化教学的实践

以铁观音碎茶为原料,通过综合改进实验考察得出从茶叶中提取咖啡因的实验条件,并和传统的水提取法、醇提取法进行对比。综合改进实验条件为:控温电热套加热,索氏提取器,95%乙醇为萃取剂,固液比1∶8(m/V),提取10次,蒸馏浓缩,水浴焙炒,200℃升华。咖啡因产率108 mg/10g,与市售绿茶产率相近。所得咖啡因结构经IR表征。在上述实验结果的基础上,提出了一种省时、绿色环保、实用的实验新方法。     

从茶叶中提取咖啡因实验方法比较

比较了几种从茶叶中提取咖啡因的实验方法,认为以茶末制成“茶砂”,用“茶砂”升华提取咖啡因的方法是一种较为可行的提取方法。     

从茶叶中提取咖啡因实验方法比较

比较了几种从茶叶中提取咖啡因的实验方法,认为以茶末制成“茶砂”,用“茶砂”升华提取咖啡因的方法是一种较为可行的提取方法.     

比较学习法在化学实验教学中的应用

介绍了从茶叶中提取咖啡因的两种不同的实验方法。针对咖啡因的特点,从提取液(乙醇和水)的性质出发,分别用索氏提取和浸提的方法分离茶叶中的咖啡因,对两种方法的实验条件、操作步骤、实验结果、教学侧重点等方面进行了比较,阐明了物质性质与实验方法、操作步骤的对应关系。学生可根据文中提供的信息,并结合具体实验操作,能够更好地理解化学实验内容,掌握有机化学实验中的比较学习法,提高创新能力和实践能力。     

“茶叶中咖啡因提取”实验方法的绿色优化研究

绿色是大学化学实验发展的方向。通过对＂茶叶中咖啡因提取＂实验中茶叶、提取器、回流提取方法的比对分析,得出红茶更适合咖啡因提取实验,采用恒压漏斗连续回流提取比索氏提取器提取效率大幅提高。对咖啡因提取中主要影响因素进行正交试验后,得出1 g红茶提取咖啡因的最佳回流时间、CaO用量和升华时间。经过一系列研究,将实验方法进行了优化设计,达到了绿色化学的要求。     

茶叶中提取天然咖啡因的方法改进

用改进升华法从茶叶中提取天然咖啡因，考察了加热仪器、提取剂种类、提取时间对产量和纯度的影响．提取物经红外光谱和热重分析鉴定为无水咖啡因，紫外分光光度分析表明提取剂种类对产品纯度几乎无影响．通过实验条件优化得到以水／乙醇（1：1）混合溶剂作为提取液、提取时间10min、电热套加热方式的最佳条件．这种提取方法具有操作简单、耗时少、步骤少、产量高的优点．     

茶叶中咖啡因的提取和分析

采用微波法,以95%乙醇为溶剂,NaAc为沉淀剂代替传统的石灰石,将萃取、升华、重结晶等方法结合在一起来提取、纯化茶叶中的咖啡碱。结果表明,产物经红外光谱鉴定分析为咖啡因,测出在茶叶中咖啡因含量为3.25%。说明微波技术辅助提取是值得推广普及的绿色萃取新方法,可以弥补有机溶剂提取成本高与时间长的不足,提高咖啡因产率。     

茶叶中提取咖啡因的实验改进

用萃取法从茶叶中提取咖啡因,探讨氧化钙量、焙烧温度及升华温度对咖啡因产率的影响,通过正交实验法得到的最佳提取条件为:氧化钙量4 g,焙炒电压100 V,升华电压为150 V,最佳条件下,咖啡因产率可达1.83%.该方法具有操作简便、时间短、产率高的特点.     

茶叶中提取咖啡因方法的改进

针对溶剂法提取茶叶中咖啡因所存在的不足，探讨了用溶剂法从茶叶中提取咖啡因的实验改进，改进后的方法不但节约了试剂用量，实验时间缩短了2h，同时也提高了16％的产品收率。     

酵母细胞麦角固醇的提取条件

通过对酵母细胞麦角固醇皂化提取条件的研究,并在不同的菌株上进行验证,以及与其他方法的对比,提出了对麦角固醇进行皂化提取的方法:即1 mL发酵液的离心沉淀物加2 mL 500 g/L的KOH和1.5 mL无水乙醇,85～90 ℃皂化3 h,麦角固醇提取效率较高.     

黄连中盐酸小檗碱不同提取工艺的比较研究

以黄连中盐酸小檗碱的提取效率和纯度为指标,对乙醇回流浸提法、硫酸常温浸提法和超声波辅助萃取法进行比较．结果发现乙醇回流浸提法、硫酸常温浸提法及分别以乙醇、硫酸为溶剂的超声波辅助萃取法的提取率为2．7％、2．6％、3．1％和3．5％,产品纯度为79．01％、89．81％、85．21％和95．91％．超声波辅助萃取法具有简便快速和节能高效的优点,是一种值得在工业上推广的提取新工艺．     

五味子红色素的提取工艺

采用pH=3的乙醇提取五味子色素, 通过单因素实验设计分别研究了提取温度、 时间、 材料与溶剂比例3种因素对五味子色素提取率的影响. 通过正交实验法, 以五味子红色素的提取率为主要指标, 对pH=3的乙醇提取五味子红色素的工艺进行优化, 确定了五味子红色素的最佳提取工艺: 以5倍量pH=3的乙醇溶液为溶剂, 75 ℃下浸提2 h. 通过对五味子红色素的红外光谱进行解析, 确定其属于吲哚类色素.     

响应面法优化仙草黄酮提取工艺研究

采用响应面优化法对仙草中黄酮的提取工艺进行研究.将乙醇浓度、提取时间及液料比作为影响因子,在单因素试验的基础上,采用响应面Box-Behnken中心组合法,进行试验设计,将仙草中黄酮的提取率作为响应指标值,进行优化试验.试验结果说明各个因素对仙草中黄酮的提取率影响强弱次序为:乙醇体积分数液料比提取时间;仙草黄酮的最佳提取条件:乙醇体积分数60%,提取时间5 h,液料比30∶1(m L/g),该条件下得到的黄酮提取率最大,实际测定值为14.37%,与预测值(14.79%)没有显著性差异.表明响应面优化法分析的结果可信,所得的最佳提取条件为仙草中黄酮的综合利用奠定了基础.     

银杏叶中总黄酮的提取和测定

本试验比较了有机溶剂浸提法和超声波法提取总黄酮的效果,选择提取率较高的超声波法来提取。对料液比、超声时间和乙醇体积浓度对银杏中总黄酮提取效果的影响进行了单因子试验,并采用正交试验法找出最佳提取条件为料液比1g∶30 mL、超声时间30min、乙醇浓度70%。采用紫外可见分光法检测黄酮类化合物的含量,不加显色剂,直接以258 nm作为最大吸收波长。结果表明,银杏中总黄酮的平均含量稳定在2.77%,精密度的RSD为0.302%,该方法的平均回收率为100.3%。本试验方法样品处理简单,准确度高,精密度好,适合于银杏叶中总黄酮的提取和测定。     

蛋黄卵磷脂的提取方法研究

用溶剂法提取蛋黄卵磷脂,用定磷法检测所得产品的含磷量,并以此作为产品质量的评价标准;研究了乙醇浓度、抽提次数、萃取温度及金属沉淀剂对实验结果的影响,得出最佳实验条件为,用95％的乙醇抽提4次,萃取温度为25℃,以ZnCl2作为金属沉淀剂．     

北沙参免疫活性多糖制备方法研究

为了确定北沙参免疫活性多糖的最佳制备方法,采用4种方法制备北沙参多糖样品,并进行体外小鼠脾淋巴细胞增殖实验,对各样品进行免疫活性比较。以提取率及体外小鼠脾淋巴细胞增殖率为指标,分析95%乙醇回流除去小分子、除蛋白及不同浓度醇沉等步骤的必要性,确定北沙参免疫活性多糖最佳制备方法。通过提取率及体外小鼠脾淋巴细胞增殖率比较,经沸水提取、浓缩和干燥后获得的北沙参免疫活性多糖样品提取率最高,达33.15%;且该样品对小鼠脾淋巴细胞的增殖作用最强,在62.5 μg/mL浓度下增殖率达到33.93%。结果显示北沙参免疫活性多糖的最佳制备方法为沸水提取、浓缩并干燥即可,无需进行95%乙醇回流除去小分子、除蛋白及不同浓度醇沉等步骤。     

利用响应面分析法优化葛根异黄酮提取工艺的研究

本文通过响应面分析方法确定葛根异黄酮最佳提取条件.以葛根异黄酮提取率为指标,利用响应面分析法分别以超声时间、乙醇浓度、料液比及提取时间等4因素为影响因子,考察各影响因子对葛根异黄酮提取率的影响.结果表明优化提取条件后葛根异黄酮的最佳提取工艺条件为:乙醇浓度为91.16%,超声时间16.59 min,料液比15.42:1,提取时间1.35 h.理论提取率为1.125 mg/g,实际测得提取率为1.025 mg/g.Box-Behnken实验设计方法可以较好地对葛根异黄酮提取工艺进行优化.     

微波辅助双水相提取苦荞麦粉中黄酮类化合物

采用微波辅助乙醇-硫酸铵双水相体系,从苦荞麦粉中提取黄酮类化合物.确定乙醇-硫酸铵双水相提取黄酮类化合物的较优乙醇体积分数以及硫酸铵添加量;通过单因素实验确定苦荞麦粉黄酮类化合物的较优萃取条件.结果表明:微波辅助双水相的方法适合用于苦荞麦粉中黄酮类化合物的提取;响应面法优化微波辅助双水相提取苦荞麦粉黄酮的提取条件,较优提取条件为萃取剂含乙醇的体积分数30%,微波功率550 W,提取时间70 s,苦荞麦粉在提取溶剂中的质量浓度0.02 g/m L,苦荞麦粉中提取得到的黄酮类化合物占苦荞麦粉的质量分数为1.38%.     

贡山厚朴多酚含量的测定及其抗氧化活性研究

采用冷浸提取法、回流提取法及超声提取法对贡山厚朴皮进行提取,对提取物中的多酚类化合物含量进行了测试,结果表明回流提取法的多酚提取率最高,为10.2%.利用微生物纸片法、DPPH法以及连苯三酚红褪色光度法对贡山厚朴乙醇提取物的抗氧化性能进行了评估,发现该提取物对活性氧(主要是1O2)有中等强度的清除活性,对DPPH自由基和羟自由基有较好的清除活性,其半数清除浓度分别为0.744 mg/m L及1.805 mg/m L.